Фиксация углерода C4 - Википедия - C4 carbon fixation

Лист анатомия в большинстве C4 растения.
А: Мезофилл клетка
B: Хлоропласт
C: Сосудистая ткань
D: Пучок оболочки клетки
E: Стома
F: Сосудистая ткань
1. CO
2 фиксируется для образования четырехуглеродной молекулы (малат или же аспартат ).
2. Молекула выходит из клетки и входит в клетки оболочки пучка.
3. Затем он разбивается на CO
2 и пируват. CO
2 входит в Цикл Кальвина производить углеводы.
4. Пируват повторно попадает в клетку мезофилла, где он повторно используется для производства малата или аспартата.

C4 фиксация углерода или же путь Хэтча-Слэка один из трех известных фотосинтетический процессы фиксация углерода в растениях. Своими названиями он обязан открытию Маршалл Дэвидсон Хэтч и Чарльз Роджер Слэк[1] что некоторые растения при поставке 14CO
2 , включить 14Сначала метка C на четырехуглеродные молекулы.

C4 фиксация - это дополнение к предковому и более распространенному C3 фиксация углерода. Основной фермент карбоксилирования в C3 фотосинтез называется RuBisCO, и катализирует две различные реакции, с CO2 (карбоксилирование), а с кислород (оксигенация), что приводит к расточительному процессу фотодыхание. C4 фотосинтез уменьшает фотодыхание за счет концентрации CO2 вокруг RuBisCO. Чтобы RuBisCO работал в среде, где много углекислого газа и очень мало кислорода, C4 листья обычно различают два частично изолированных отдела, называемых клетки мезофилла и связка-оболочка клетки. CO2 первоначально фиксируется в клетках мезофилла ферментом Карбоксилаза PEP который реагирует на три углерода фосфоенолпируват (PEP) с CO
2 сформировать четыре углерода щавелевоуксусная кислота (OAA). OAA можно химически восстановить до малат или трансаминированный в аспартат. Они диффундируют в клетки оболочки пучка, где они декарбоксилируются, создавая CO2 богатая среда вокруг RuBisCO и тем самым подавляющая фотодыхание. Полученный пируват (PYR) вместе с примерно половиной фосфоглицерата (PGA), продуцируемого Rubisco, диффундирует обратно в мезофилл. Затем PGA химически восстанавливается и диффундирует обратно в оболочку пучка для завершения восстановительный пентозофосфатный цикл (РПП). Этот обмен метаболитов необходим для C4 фотосинтез на работу.

С одной стороны, эти дополнительные шаги требуют больше энергии в виде АТФ используется для регенерации PEP. С другой стороны, концентрация CO2 позволяет преодолеть снижение растворимости газа с повышением температуры (Закон Генри ), обеспечивающий высокую скорость фотосинтеза при высоких температурах. Сотрудничество2 концентрирующий механизм также позволяет поддерживать высокие градиенты CO2 концентрация через устьица l поры. Это означает, что C4 у растений обычно ниже устьичная проводимость, уменьшают потери воды и в целом имеют более высокие эффективность водопользования.[2] C4 растения также более эффективно используют азот, так как производство PEP-карбоксилазы намного дешевле, чем RuBisCO.[3] Однако поскольку C3 не требует дополнительной энергии для регенерации ПКП, он более эффективен в условиях, когда фотодыхание ограничено, как правило, при низких температурах и в тени.[4]

Открытие

Первые опыты, показывающие, что некоторые растения не используют C3 фиксация углерода но вместо этого производят малат и аспартат на первом этапе фиксации углерода были сделаны в 1950-х и начале 1960-х годов Хьюго Петер Корчак и Юрий Карпилов.[5][6] C4 путь был выяснен Маршалл Дэвидсон Хэтч и Чарльз Роджер Слэк в Австралии в 1966 году;[1] его иногда называют путем Хетча – Слака.

Анатомия

Поперечное сечение кукуруза лист, а C4 растение. Анатомия Кранца (кольца клеток) показана

C4 растения часто обладают характеристикой лист анатомия называется анатомия Кранца, от немецкого слова для венок. Их сосудистые пучки окружены двумя кольцами ячеек; внутреннее кольцо, называемое связка клеток оболочки, содержит крахмал -богатые хлоропласты не хватает грана, которые отличаются от мезофилл клетки присутствуют как внешнее кольцо. Следовательно, хлоропласты называют диморфными. Основная функция анатомии Кранца - обеспечить место, в котором CO
2 можно сосредоточить вокруг RuBisCO, тем самым избегая фотодыхание. Клетки мезофилла и оболочки пучка соединены многочисленными цитоплазматическими рукавами, называемыми плазмодесматы проницаемость которого на уровне листа называется проводимостью оболочки пучка. Слой Суберин[7] часто откладывается на уровне средняя пластина (тангенциальная граница между мезофиллом и оболочкой пучка), чтобы уменьшить апопластический распространение CO
2 (называется утечкой). Механизм концентрации углерода в C4 растения отличает их изотопная подпись от других фотосинтетических организмы.

Хотя большинство C4 растения обладают анатомией Кранца, однако есть несколько видов, которые имеют ограниченную C4 цикл без какой-либо отчетливой ткани оболочки пучка. Suaeda aralocaspica, Bienertia cycloptera, Bienertia sinuspersici и Bienertia kavirense (все ченоподы ) - это наземные растения, населяющие засушливые, соленые впадины в пустынях Средний Восток. Было показано, что эти растения работают с одноклеточным C4 CO
2-концентрирующие механизмы, уникальные среди известных C4 механизмы.[8][9][10][11] Хотя цитология обоих родов немного отличается, основной принцип заключается в том, что вакуоли используются для разделения клетки на две отдельные области. Ферменты карбоксилирования в цитозоль поэтому может храниться отдельно от декарбоксилаза ферменты и RuBisCO в хлоропластах, и может быть установлен диффузионный барьер между хлоропластами (которые содержат RuBisCO) и цитозолем. Это позволяет создать область типа связки-влагалища и область типа мезофилла в пределах одной клетки. Хотя это позволяет ограниченный C4 цикла для работы, он относительно неэффективен, с возникновением большой утечки CO
2 со всего RuBisCO. Имеются также свидетельства проявления индуцибельного C4 фотосинтез с помощью некранца водных макрофит Hydrilla verticillata в теплых условиях, хотя механизм, с помощью которого CO
2 утечка со всего RuBisCO сведена к минимуму, в настоящее время неясно.[12]

Биохимия

В C3 растения, первый шаг в светонезависимые реакции фотосинтеза - это фиксация CO
2 ферментом RuBisCO формировать 3-фосфоглицерат. Однако у RuBisCo есть двойная карбоксилаза и оксигеназа Мероприятия. Окисление приводит к тому, что часть субстрата окисленный скорее, чем карбоксилированный, что приводит к потере субстрата и потреблению энергии, что известно как фотодыхание. Оксигенация и карбоксилирование конкурентный, что означает, что скорость реакции зависит от относительной концентрации кислорода и CO2.

В целях снижения скорости фотодыхание, С4 растения увеличивают концентрацию CO
2 вокруг RuBisCO. Для этого в листьях различаются два частично изолированных отдела: мезофилл и связка ножен. Вместо прямой фиксации на RuBisCO, CO
2 изначально включен в четырехуглеродный органическая кислота (либо малат или же аспартат ) в мезофилле. Органическая кислота образуется, затем диффундирует через плазмодесматы в клетки оболочки пучка, где они декарбоксилируются, создавая CO
2 -богатая среда. Хлоропласты клеток оболочки пучка преобразуют это CO
2 в углеводы обычным C3 путь.

Биохимические особенности ассимиляции C4 сильно различаются, и, как правило, он подразделяется на три подтипа, дифференцированных по основному ферменту, используемому для декарбоксилирования ( НАДФ-яблочный фермент, НАДФ-МЭ; НАД-яблочный фермент, НАД-МЕ; и Карбоксикиназа ПЭП, PEPCK). Поскольку PEPCK часто рекрутируется поверх NADP-ME или NAD-ME, было предложено классифицировать биохимическую изменчивость на два подтипа. Например, кукуруза и сахарный тростник используйте комбинацию NADP-ME и PEPCK, просо использует преимущественно НАД-МЕ и мегатирс максимус, предпочтительно использует PEPCK.

НАДП-МЭ

Подтип НАДП-МЕ

Первый шаг в НАДП-МЭ тип C4 путь - это преобразование пируват (Pyr) в фосфоенолпируват (PEP) ферментом Пируватфосфатдикиназа (ППДК). Эта реакция требует неорганического фосфата и АТФ плюс пируват, продуцирующий PEP, AMP, и неорганические пирофосфат (ППя). Следующим шагом является фиксация CO
2 в оксалоацетат посредством Карбоксилаза PEP фермент (PEPC). Оба эти этапа происходят в клетках мезофилла:

пируват + Pя + АТФ → ПЭП + АМФ + ППя
PEP + CO
2 → оксалоацетат

PEPC имеет низкий Км за HCO−
3 - и, следовательно, высокое сродство, и его не смущает O2 таким образом, он будет работать даже при низких концентрациях CO
2.

Продукт обычно конвертируется в малат (M), который диффундирует к клеткам пучка-оболочки, окружающим ближайший вена. Здесь он декарбоксилируется НАДФ-яблочный фермент (НАДП-МЭ) производить CO
2 и пируват. В CO
2 установлено RuBisCo для производства фосфоглицерат (PGA), пока пируват транспортируется обратно в мезофилл ячейки вместе с примерно половиной фосфоглицерат (PGA). Этот PGA химически восстанавливается в мезофилле и диффундирует обратно в оболочку пучка, где он входит в фазу конверсии Цикл Кальвина. Для каждого СО2 Молекула, экспортированная в оболочку пучка, малатный челнок передает два электрона и, следовательно, снижает потребность в снижении мощности в оболочке пучка.

НАД-МЕ

Подтип НАД-МЕ

Здесь OAA, продуцируемый PEPC, трансаминируется аспартатаминотрансферазой в аспартат (ASP), который является метаболитом, диффундирующим в оболочку пучка. В оболочке пучка ASP снова трансаминируется до OAA, а затем подвергается бесполезному восстановлению и окислительному декарбоксилированию с выделением CO2. Образовавшийся пируват трансаминируется в аланин, диффундируя в мезофилл. Наконец, аланин трансаминируется в пируват (PYR), который может быть регенерирован в PEP с помощью PPDK в хлоропластах оболочки пучка. Этот цикл обходит реакцию малатдегидрогеназы в мезофилле и, следовательно, не переносит восстанавливающие эквиваленты в оболочку пучка.

PEPCK

Подтип PEPCK

В этом варианте OAA, продуцируемый аспартатаминотрансферазой в оболочке пучка, декарбоксилируется до PEP с помощью PEPC. Судьба PEP все еще обсуждается. Самое простое объяснение состоит в том, что PEP будет диффундировать обратно в мезофилл, чтобы служить субстратом для PEPC. Поскольку PEPCK использует только одну молекулу АТФ, регенерация PEP посредством PEPCK теоретически повысит фотосинтетическую эффективность этого подтипа, однако это никогда не измерялось. Увеличение относительной экспрессии PEPCK наблюдалось при слабом освещении, и было предложено сыграть роль в облегчении баланса энергетических потребностей между мезофиллом и оболочкой пучка.

Обмен метаболитов

Пока в C3 фотосинтез, на который способен каждый хлоропласт. легкие реакции и темные реакции, С4 хлоропласты дифференцируются в двух популяциях, содержащихся в мезофилле и клетках оболочки пучка. Разделение фотосинтетической работы между двумя типами хлоропластов неизбежно приводит к обильному обмену промежуточными продуктами между ними. Потоки велики и могут в десять раз превышать скорость валовой ассимиляции.[13] Тип обменяемого метаболита и общая скорость будут зависеть от подтипа. Чтобы снизить ингибирование продуктом фотосинтетических ферментов (например, PECP), градиенты концентрации должны быть как можно более низкими. Это требует увеличения проводимости метаболитов между мезофиллом и оболочкой пучка, но это также увеличивает ретродиффузию CO.2 из оболочки пучка, что приводит к неизбежному компромиссу в оптимизации CO2 концентрирующий механизм.

Сбор света и световые реакции

Чтобы встретить НАДФН и АТФ требует в мезофилле и оболочке пучка, свет должен собираться и распределяться между двумя отдельными цепями переноса электронов. АТФ может производиться в оболочке пучка главным образом за счет циклического потока электронов вокруг Фотосистемы I или в М в основном за счет линейного потока электронов в зависимости от света, доступного в оболочке пучка или в мезофилле. Относительная потребность в АТФ и НАДФН в каждом типе клеток будет зависеть от фотосинтетического подтипа.[14] Распределение энергии возбуждения между двумя типами клеток будет влиять на доступность АТФ и НАДФН в мезогилле и оболочке пучка. Например, зеленый свет не сильно адсорбируется клетками мезофилла и может преимущественно возбуждать клетки оболочки пучка, или vлед наоборот для синего света.[15] Поскольку оболочки пучков окружены мезофиллом, сбор света в мезофилле уменьшает доступный свет для достижения клеток BS. Кроме того, размер оболочки пучка ограничивает количество собираемого света.[16]

Эффективность

Возможны различные формулировки эффективности в зависимости от того, какие выходы и входы рассматриваются. Например, средняя квантовая эффективность - это отношение между полной ассимиляцией и интенсивностью поглощенного или падающего света. В литературе сообщается о большой вариабельности измеряемой квантовой эффективности между растениями, выращенными в разных условиях и классифицируемыми по разным подтипам, но основы все еще неясны. Одним из компонентов квантовой эффективности является эффективность темновых реакций, биохимическая эффективность, которая обычно выражается в обратных терминах как стоимость общей ассимиляции АТФ (ATP / GA). В C3 фотосинтез ATP / GA зависит в основном от CO2 и O2 концентрация на сайтах карбоксилирования RuBisCO. Когда CO2 концентрация высокая и O2 концентрация низкая, фотодыхание подавляется и C3 ассимиляция происходит быстро и эффективно, при этом уровень АТФ / ГА приближается к теоретическому минимуму 3. В C4 фотосинтез CO2 концентрация на сайтах карбоксилирования RuBisCO в основном является результатом работы CO2 механизмы концентрирования, которые стоят около 2 дополнительных АТФ / ГА, но делают эффективность относительно нечувствительной к внешнему CO2 концентрация в широком диапазоне условий. Биохимическая эффективность зависит в основном от скорости CO.2 доставляется в оболочку пучка и, как правило, уменьшается при слабом освещении, когда скорость карбоксилирования PEP снижается, что снижает соотношение CO2/ O2 концентрация на сайтах карбоксилирования RuBisCO. Ключевым параметром, определяющим, насколько снизится эффективность при слабом освещении, является проводимость оболочки пучка. Растения с более высокой проводимостью оболочки пучка будут способствовать обмену метаболитов между мезофиллом и оболочкой пучка и будут способны к высокой скорости ассимиляции при ярком освещении. Однако у них также будет высокий уровень CO.2 ретродиффузия из оболочки пучка (так называемая утечка), которая увеличивает фотодыхание и снижает биохимическую эффективность при тусклом свете. Это представляет собой неотъемлемый и неизбежный компромисс в работе C4 фотосинтез. C4 растения обладают выдающейся способностью настраивать проводимость оболочки пучка. Интересно, что проводимость оболочки пучка снижается у растений, выращиваемых при слабом освещении.[17] и в растениях, выращиваемых при ярком освещении, впоследствии переходят в режим слабого освещения, как это происходит в пологах сельскохозяйственных культур, где старые листья затенены новым ростом.[18]

Эволюция и преимущества

Дальнейшая информация: Эволюционная история растений § Эволюция фотосинтетических путей

C4 растения имеют конкурентное преимущество перед заводами, обладающими более распространенными C3 фиксация углерода путь в условиях засуха, высоко температуры, и азот или же CO
2 ограничение. При выращивании в той же среде при 30 ° C, C3 травы теряют примерно 833 молекулы воды на CO
2 молекула, которая фиксирована, тогда как C4 травы теряют только 277. Это увеличило эффективность водопользования из C4 Травы означают, что влажность почвы сохраняется, что позволяет им дольше расти в засушливых условиях.[19]

C4 фиксация углерода развился до 61 независимого случая в 19 различных семействах растений, что делает его ярким примером конвергентная эволюция.[20] Этой конвергенции, возможно, способствовал тот факт, что многие потенциальные пути эволюции к C4 фенотип существуют, многие из которых включают начальные этапы эволюции, не связанные напрямую с фотосинтезом.[21] C4 растения выросли вокруг 35 миллион лет назад[20] вовремя Олигоцен (когда именно трудно определить) и не стали экологически значимыми до тех пор, пока С 6 до 7 миллион лет назад, в Миоцен.[22] C4 метаболизм у трав возник, когда их среда обитания переместилась из тенистого леса под покров в более открытую среду,[23] где яркий солнечный свет давал ему преимущество перед C3 путь.[24] Для его нововведения не требовалась засуха; скорее, повышенная экономия в использовании воды была побочным продуктом пути и позволила C4 растения, чтобы легче колонизировать засушливые среды.[24]

Сегодня, C4 растения составляют около 5% биомассы растений Земли и 3% известных видов растений.[19][25] Несмотря на этот дефицит, на них приходится около 23% фиксации углерода земной поверхностью.[22][26] Увеличение доли C4 растения на земле могут помочь биосеквестрация из CO
2 и представляют собой важный изменение климата стратегия избегания. Современный C4 растения сосредоточены в тропиках и субтропиках (ниже 45 градусов широты), где высокая температура воздуха увеличивает скорость фотодыхания на C3 растения.

Растения, которые используют C4 фиксация углерода

Смотрите также: Список C4 растения

Около 8100 видов растений используют C4 фиксация углерода, составляющая около 3% всех наземных видов растений.[26][27] Все эти 8100 видов являются покрытосеменные. C4 фиксация углерода чаще встречается в однодольные по сравнению с двудольные, с 40% однодольных с использованием C4 пути, по сравнению только с 4,5% двудольных. Несмотря на это, только три семьи однодольных использовать C4 фиксация углерода по сравнению с 15 семействами двудольных. Из клад однодольных, содержащих C4 растения, трава (Poaceae ) виды используют C4 фотосинтетический путь больше всего. 46% злаков - это C4 и вместе составляют 61% C4 разновидность. C4 возник независимо в семействе злаковых около двадцати и более раз, в различных подсемействах, племенах и родах,[28] в том числе Andropogoneae племя, которое содержит продовольственные культуры кукуруза, сахарный тростник, и сорго. Различные виды просо также являются C4.[29][30] Из клад двудольных, содержащих C4 виды, порядок Caryophyllales содержит больше всего видов. Из семейств Caryophyllales Chenopodiaceae использовать C4 фиксации углерода - 550 из 1400 видов. Около 250 из 1000 видов родственных Amaranthaceae также используйте C4.[19][31]

Члены семейства осоковых Cyperaceae, и члены многочисленных семей эвдикоты - включая Сложноцветные (семья ромашек), Brassicaceae (семейство капустных) и Молочай (семейство молочай) - также используйте C4.

Очень мало деревьев, использующих C4. Известно лишь несколько: Павловния, семь гавайских Молочай виды и несколько пустынных кустарников, которые с возрастом достигают размера и формы деревьев.[32][33]

Преобразование C3 растения до C4

Учитывая преимущества C4, группа ученых из учреждений по всему миру работает над C4 Rice Project по производству сорта рис, естественно a C3 растение, использующее C4 путь, изучая C4 растения кукуруза и Брахиподиум.[34] Поскольку рис является важнейшим продуктом питания человека в мире (он является основным продуктом питания более чем половины планеты), наличие риса, который более эффективно превращает солнечный свет в зерно, может иметь значительные глобальные преимущества для улучшения Продовольственная безопасность. Команда требует C4 рис может производить на 50% больше зерна - и при этом потреблять меньше воды и питательных веществ.[35][36][37]

Исследователи уже определили гены, необходимые для C4 фотосинтез в рисе, и сейчас мы планируем разработать прототип C4 рисовое растение. В 2012 г. Правительство Соединенного Королевства вместе с Фонд Билла и Мелинды Гейтс при условии АМЕРИКАНСКИЙ ДОЛЛАР$ 14 миллионов за три года в направлении C4 Рисовый проект в Международный научно-исследовательский институт риса.[38]

Смотрите также

Рекомендации

  1. ^ а б Slack CR, Hatch MD (июнь 1967 г.). «Сравнительные исследования активности карбоксилаз и других ферментов в отношении нового пути фотосинтетической фиксации диоксида углерода в тропических травах». Биохимический журнал. 103 (3): 660–5. Дои:10.1042 / bj1030660. ЧВК  1270465. PMID  4292834.
  2. ^ Осборн С. П., Мешок Л. (февраль 2012 г.). «Эволюция растений C4: новая гипотеза взаимодействия CO2 и водных отношений, опосредованных гидравликой растений». Философские труды Лондонского королевского общества. Серия B, Биологические науки. 367 (1588): 583–600. Дои:10.1098 / rstb.2011.0261. ЧВК  3248710. PMID  22232769.
  3. ^ Sage RF, Pearcy RW (июль 1987 г.). «Эффективность использования азота растениями C (3) и C (4): I. Азот в листьях, рост и разделение биомассы в Chenopodium album (L.) и Amaranthus retroflexus (L.)». Физиология растений. 84 (3): 954–8. Дои:10.1104 / стр. 84.3.954. PMID  16665550.
  4. ^ Bellasio C, Farquhar GD (июль 2019 г.). «3 риса: прибыли, потери и потоки метаболитов». Новый Фитолог. 223 (1): 150–166. Дои:10.1111 / nph.15787. PMID  30859576.
  5. ^ Никелл LG (февраль 1993 г.). "Посвящение Хьюго П. Корчаку: человеку, ученому и первооткрывателю фотосинтеза C4". Фотосинтез Исследования. 35 (2): 201–4. Дои:10.1007 / BF00014751. PMID  24318687. S2CID  40107210.
  6. ^ Хэтч МД (2002 г.). «C (4) фотосинтез: открытие и разрешение». Фотосинтез Исследования. 73 (1–3): 251–6. Дои:10.1023 / А: 1020471718805. PMID  16245128. S2CID  343310.
  7. ^ Laetsch (1971). Люк; Осмонд; Слейер (ред.). Фотосинтез и фотодыхание. Нью-Йорк, Wiley-Interscience.
  8. ^ Freitag H, Stichler W (2000). «Замечательный новый тип листьев с необычной фотосинтетической тканью в центральноазиатском роде Chenopodiaceae». Биология растений. 2 (2): 154–160. Дои:10.1055 / с-2000-9462.
  9. ^ Вознесенская Е.В., Франчески В.Р., Кийрац О., Артюшева Е.Г., Фрайтаг Х., Эдвардс Г.Е. (сентябрь 2002 г.). «Доказательство фотосинтеза C4 без анатомии Кранца у Bienertia cycloptera (Chenopodiaceae)». Журнал растений. 31 (5): 649–62. Дои:10.1046 / j.1365-313X.2002.01385.x. PMID  12207654. S2CID  14742876.
  10. ^ Ахани Х., Баррока Дж., Котеева Н., Вознесенская Е., Франчески В., Эдвардс Дж., Гаффари С. М., Циглер Х (2005). "Bienertia sinuspersici (Chenopodiaceae): новый вид из Юго-Западной Азии и открытие третьего наземного вида C.4 Растение без анатомии Кранца ». Систематическая ботаника. 30 (2): 290–301. Дои:10.1600/0363644054223684. S2CID  85946307.
  11. ^ Ахани Х., Чатренур Т., Дехгани М., Хошравеш Р., Махдави П., Матинзаде З. (2012). "Новый вид Bienertia (Chenopodiaceae) из иранских соляных пустынь: третий вид рода и открытие четвертого наземного C.4 растение без анатомии Кранца ». Биосистемы растений. 146: 550–559. Дои:10.1080/11263504.2012.662921. S2CID  85377740.
  12. ^ Holaday AS, Bowes G (февраль 1980 г.). «Кислотный метаболизм C (4) и фиксация темного CO (2) у погруженных водных макрофитов (Hydrilla verticillata)». Физиология растений. 65 (2): 331–5. Дои:10.1104 / стр.65.2.331. ЧВК  440321. PMID  16661184.
  13. ^ Bellasio C (январь 2017 г.). «Обобщенная стехиометрическая модель фотосинтетического метаболизма C3, C2, C2 + C4 и C4». Журнал экспериментальной ботаники. 68 (2): 269–282. Дои:10.1093 / jxb / erw303. ЧВК  5853385. PMID  27535993.
  14. ^ Bellasio C (январь 2017 г.). «Обобщенная стехиометрическая модель фотосинтетического метаболизма C3, C2, C2 + C4 и C4». Журнал экспериментальной ботаники. 68 (2): 269–282. Дои:10.1093 / jxb / erw303. ЧВК  5853385. PMID  27535993.
  15. ^ Эванс-младший, Фогельманн ТК, фон Каммерер С. (2008-03-01), «Уравновешивание захвата света с распределенной метаболической потребностью во время фотосинтеза C4», Планирование новых путей получения риса C4, МИРОВАЯ НАУЧНАЯ, стр. 127–143, Дои:10.1142/9789812709523_0008, ISBN  978-981-270-951-6, получено 2020-10-12
  16. ^ Bellasio C, Lundgren MR (октябрь 2016 г.). «Анатомические ограничения эволюции C4: способность собирать свет в оболочке пучка». Новый Фитолог. 212 (2): 485–96. Дои:10.1111 / nph.14063. PMID  27375085.
  17. ^ Беллазио К., Гриффитс Х (май 2014 г.). «Акклиматизация кукурузы C4 к слабому освещению: последствия для неплотности оболочки пучка». Растения, клетки и окружающая среда. 37 (5): 1046–58. Дои:10.1111 / pce.12194. PMID  24004447.
  18. ^ Беллазио С, Гриффитс Х (июль 2014 г.). «Акклимация метаболизма C4 к низкому свету в зрелых листьях кукурузы может ограничить потери энергии во время постепенного затенения на пологе сельскохозяйственных культур». Журнал экспериментальной ботаники. 65 (13): 3725–36. Дои:10.1093 / jxb / eru052. ЧВК  4085954. PMID  24591058.
  19. ^ а б c Мудрец Р., Монсон Р. (1999). "7". C4 Биология растений. С. 228–229. ISBN  978-0-12-614440-6.
  20. ^ а б Мудрец РФ (01.02.2004). "Эволюция C4 фотосинтез ». Новый Фитолог. 161 (2): 341–370. Дои:10.1111 / j.1469-8137.2004.00974.x. ISSN  1469-8137.
  21. ^ Уильямс Б.П., Джонстон И.Г., Ковшофф С., Хибберд Дж. М. (сентябрь 2013 г.). «Фенотипический ландшафтный вывод показывает множественные эволюционные пути к фотосинтезу C4». eLife. 2: e00961. Дои:10.7554 / eLife.00961. ЧВК  3786385. PMID  24082995.
  22. ^ а б Осборн С.П., Beerling DJ (Январь 2006 г.). «Зеленая революция природы: выдающийся эволюционный рост растений C4». Философские труды Лондонского королевского общества. Серия B, Биологические науки. 361 (1465): 173–94. Дои:10.1098 / rstb.2005.1737. ЧВК  1626541. PMID  16553316.
  23. ^ Эдвардс Э.Дж., Смит С.А. (февраль 2010 г.). «Филогенетический анализ раскрывает тенистую историю трав C4». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки. 107 (6): 2532–7. Bibcode:2010PNAS..107.2532E. Дои:10.1073 / pnas.0909672107. ЧВК  2823882. PMID  20142480.
  24. ^ а б Осборн С.П., Фреклтон Р.П. (май 2009 г.). «Экологические факторы отбора для фотосинтеза C4 в травах». Ход работы. Биологические науки. 276 (1663): 1753–60. Дои:10.1098 / rspb.2008.1762. ЧВК  2674487. PMID  19324795.
  25. ^ Бонд В.Дж., Вудворд ФИ, Мидгли Г.Ф. (февраль 2005 г.). «Глобальное распределение экосистем в мире без огня». Новый Фитолог. 165 (2): 525–37. Дои:10.1111 / j.1469-8137.2004.01252.x. PMID  15720663.
  26. ^ а б Kellogg EA (Июль 2013). «С4 фотосинтез». Текущая биология. 23 (14): R594-9. Дои:10.1016 / j.cub.2013.04.066. PMID  23885869.
  27. ^ Сейдж РФ (июль 2016 г.). «Портрет фотосинтетического семейства C4 к 50-летию со дня открытия: количество видов, эволюционные линии и Зал славы». Журнал экспериментальной ботаники. 67 (14): 4039–56. Дои:10.1093 / jxb / erw156. PMID  27053721.
  28. ^ Рабочая группа II по филогении трав (январь 2012 г.). «Новая филогения травы разрешает глубокие эволюционные отношения и обнаруживает происхождение C4». Новый Фитолог. 193 (2): 304–12. Дои:10.1111 / j.1469-8137.2011.03972.x. HDL:2262/73271. PMID  22115274. открытый доступ
  29. ^ Мудрец Р., Монсон Р. (1999). "16". C4 Биология растений. С. 551–580. ISBN  978-0-12-614440-6.
  30. ^ Чжу XG, Long SP, Ort DR (апрель 2008 г.). «Какова максимальная эффективность, с которой фотосинтез может преобразовывать солнечную энергию в биомассу?». Текущее мнение в области биотехнологии. 19 (2): 153–9. Дои:10.1016 / j.copbio.2008.02.004. PMID  18374559.
  31. ^ Кадерайт Г, Борщ Т, Вайзинг К, Фрайтаг Х (2003). «Филогения Amaranthaceae и Chenopodiaceae и эволюция C.4 Фотосинтез ». Международный журнал наук о растениях. 164 (6): 959–986. Дои:10.1086/378649. S2CID  83564261.
  32. ^ Ика П., Дамо Р., Ика Е. (27.10.2016). "Павловния опушенная, быстрорастущая древесина ». Летопись "Валахия" Университет Тырговиште - Сельское хозяйство. 10 (1): 14–19. Дои:10.1515 / agr-2016-0003.
  33. ^ Мудрец РФ, Султманис С (сентябрь 2016 г.). «4 леса?». Журнал физиологии растений. 203: 55–68. Дои:10.1016 / j.jplph.2016.06.009. PMID  27481816.
  34. ^ Слевински Т.Л., Андерсон А.А., Чжан С., Тургеон Р. (декабрь 2012 г.). «Пугало играет роль в установлении анатомии Кранца в листьях кукурузы». Физиология растений и клеток. 53 (12): 2030–7. Дои:10,1093 / шт / шт 147. PMID  23128603.
  35. ^ Жиль ван Коте (24.01.2012). «Исследователи стремятся переключить потребление высокоуглеродистого риса». Хранитель. Получено 2012-11-10.
  36. ^ фон Caemmerer S, Quick WP, Furbank RT (июнь 2012 г.). «Развитие C₄rice: текущий прогресс и будущие вызовы». Наука. 336 (6089): 1671–2. Bibcode:2012Научный ... 336.1671V. Дои:10.1126 / science.1220177. PMID  22745421. S2CID  24534351.
  37. ^ Хибберд Дж. М., Шихи Дж. Э., Langdale JA (Апрель 2008 г.). «Использование фотосинтеза C4 для увеличения урожайности риса - обоснование и возможность». Текущее мнение в области биологии растений. 11 (2): 228–31. Дои:10.1016 / j.pbi.2007.11.002. PMID  18203653.
  38. ^ Хасан М (06.11.2012). "C4 рисовый проект получает финансовую поддержку ". Новости. Получено 2012-11-10.

внешняя ссылка