Комплементация бимолекулярной флуоресценции - Википедия - Bimolecular fluorescence complementation

Формирование белковых комплексов с использованием BiFC. Сначала происходит взаимодействие между белком А и белком В, за которым следует повторное образование и флуоресценция флуоресцентного репортерного белка.

Комплементация бимолекулярной флуоресценции (также известен как BiFC) - это технология, обычно используемая для проверки белок взаимодействия. Он основан на ассоциации фрагментов флуоресцентного белка, которые прикреплены к компонентам одного и того же макромолекулярный сложный. Белки, которые, как предполагается, взаимодействуют, сливаются с развернутыми комплементарными фрагментами флуоресцентного репортерный белок и экспрессируется в живых клетках. Взаимодействие этих белков приведет к сближению флуоресцентных фрагментов, что позволит репортерному белку преобразоваться в своем родная трехмерная структура и испускать флуоресцентный сигнал.[1] Этот флуоресцентный сигнал может быть обнаружен и локализован внутри клетки с помощью инвертированный флуоресцентный микроскоп что позволяет визуализировать флуоресценцию в клетках. Кроме того, интенсивность испускаемой флуоресценции пропорциональна силе взаимодействия, при этом более высокие уровни флуоресценции указывают на тесные или прямые взаимодействия, а более низкие уровни флуоресценции указывают на взаимодействие внутри комплекса.[2] Следовательно, посредством визуализации и анализа интенсивности и распределения флуоресценции в этих клетках можно идентифицировать как местоположение, так и партнеров по взаимодействию интересующих белков.

История

Биохимический дополнение впервые был обнаружен в расщепленном субтилизином бык панкреатический рибонуклеаза, затем расширили с помощью β-галактозидаза мутанты, которые позволили клеткам расти на лактозе.[3][4][5]

Позже сообщалось о признании способности многих белков спонтанно собираться в функциональные комплексы, а также способности фрагментов белка собираться как следствие спонтанной сборки функциональных комплексов партнеров взаимодействия, с которыми они сливаются. убиквитин фрагменты во взаимодействиях дрожжевых белков.[6]

В 2000 году Гош и другие разработал систему, которая позволила зеленый флуоресцентный белок (GFP ) для повторной сборки с помощью антипараллельный лейциновая молния в Кишечная палочка клетки.[7] Это было достигнуто путем разделения GFP на C- и N-концевой Фрагменты GFP. Поскольку фрагмент GFP был прикреплен к каждой лейциновой застежке с помощью линкера, гетеродимеризация антипараллельной лейциновой застежки приводила к восстановленному или реформированному белку GFP, который можно было визуализировать. Успешный флуоресцентный сигнал показал, что отдельные фрагменты пептида GFP были способны правильно собираться и достигать третичное складывание. Поэтому было постулировано, что с помощью этого метода фрагментированный GFP может быть использован для изучения взаимодействие белок-белок пары, у которых N – C-концы находятся в непосредственной близости.

После демонстрации успешного восстановления фрагмента флуоресцентного белка в клетках млекопитающих, Hu и другие. описал использование фрагментированных желтый флуоресцентный белок (YFP ) в расследовании bZIP и семейства Rel фактор транскрипции взаимодействия.[8] Это был первый отчет о регуляции взаимодействия с белком bZIP регионами за пределами bZIP домен, регулирование субъядерный локализация доменов bZIP Fos и Июн их различными взаимодействующими партнерами, и модуляция активация транскрипции белков bZIP и Rel посредством взаимных взаимодействий. Кроме того, это исследование было первым отчетом in vivo метод, теперь известный как анализ комплементации бимолекулярной флуоресценции (BiFC), чтобы обеспечить понимание структурной основы образования белковых комплексов путем обнаружения флуоресценции, вызванной сборкой флуоресцентных фрагментов репортерного белка, привязанных к взаимодействующим белкам.[8]

Флуоресцентная маркировка

Флуорофор Активация происходит в результате реакции автокаталитической циклизации, которая происходит после того, как белок был правильно свернут.[9] Это было продвинуто с успешным восстановлением флуорофора YFP из фрагментов белка, которые были слиты с взаимодействующими белками в течение 8 часов после трансфекции, о чем сообщалось в 2002 году.[8]

Рабочий процесс

Рабочий процесс для BiFC

Выбор системы производства гибридных белков

Они разные производственные системы который может быть использован для полученного гибридного белка. Временная экспрессия генов используется для определения межбелковых взаимодействий. in vivo а также в субклеточной локализации комплекса BiFC. Однако следует проявлять осторожность во избежание чрезмерной экспрессии белка, поскольку это может исказить как предпочтительную локализацию, так и преобладающие образующиеся белковые комплексы. Вместо слабого промоутеры, использование низких уровней плазмидной ДНК при трансфекции и плазмидные векторы, которые не реплицируются в клетках млекопитающих, должны использоваться для экспрессии белков на своих эндогенных уровнях или около них, чтобы имитировать физиологическую клеточную среду.[10] Также важен тщательный выбор флуоресцентного белка, поскольку для разных флуоресцентных белков требуется разная клеточная среда. Например, GFP можно использовать в Кишечная палочка клетки, тогда как YFP используется в клетках млекопитающих.[11]

Стабильный Сотовые линии с вектором экспрессии, интегрированным в его геном, позволяет более стабильно экспрессия гена в клеточной популяции, что приводит к более стабильным результатам.[1]

Определение мест слияния

При выборе сайта слияния линкера на поверхности белка необходимо учитывать три основных момента. Во-первых, флуоресцентные белковые фрагменты должны иметь возможность связываться друг с другом, когда их связанные белки взаимодействуют.[10] Структурная информация и расположение поверхности взаимодействия могут быть полезны при определении сайта слияния с линкером, хотя эта информация не является необходимой, поскольку можно отсеивать несколько комбинаций и перестановок.[10] Во-вторых, создание слитого белка не должно существенно изменять локализацию, стабильность или экспрессию белков, с которыми связаны фрагменты, по сравнению с белком. эндогенный дикого типа белки.[10] Наконец, добавление слияния флуоресцентных фрагментов не должно влиять на биологическую функцию белка, что предпочтительно проверяется с помощью анализов, которые оценивают все известные функции белков.[10]

Создание линкеров

Компоновщик - это короткий аминокислотная последовательность который связывает фрагмент флуоресцентного репортерного белка с интересующим белком, образуя гибридный белок. При разработке линкерной последовательности необходимо убедиться, что линкер достаточно растворимый и долго, чтобы обеспечить флуоресцентным белковым фрагментам гибкость и свободу движения, так что фрагмент и его партнерский фрагмент будут сталкиваться достаточно часто для восстановления во время взаимодействия их соответствующих слитых белков.[1] Хотя это не задокументировано, возможно, что длина или последовательность линкера могут влиять на комплементацию некоторых белков.[10] Сообщенные линкерные последовательности RSIAT и RPACKIPNDLKQKVMNH (код одной аминокислоты) и AAANSSIDLISVPVDSR (Sigma) успешно использовались в экспериментах BiFC.[8][12]

Создание подходящих векторов экспрессии плазмид

При проектировании плазмидные векторы чтобы выразить интересующие белки, строить должны быть способны экспрессировать белки, которые способны образовывать слитые белки с флуоресцентными фрагментами белка без нарушения функции белка. Кроме того, ожидаемый белковый комплекс должен быть в состоянии принять стабилизацию взаимодействия флуоресцентных белковых фрагментов, не влияя на функцию белкового комплекса или исследуемую клетку. В BiFC можно использовать многие фрагменты флуоресцентного белка, которые объединяются несколькими способами.[8][12] Как правило, рекомендуется использовать YFP в качестве репортерного белка, расщепляемого на остаток 155 (N-конец, состоящий из остатков 1–154 и C-конец, состоящий из остатков 155–238) или остаток 173, в частности, поскольку эти наборы фрагментов очень эффективны в их комплементации при слиянии со многими взаимодействующими белками, и они производят низкие уровни флуоресценция при слиянии с невзаимодействующими белками. Предполагается, что каждый целевой белок сливается как с N-, так и с С-концевыми фрагментами флуоресцентного репортерного белка по очереди, и что эти фрагменты сливаются на каждом из N- и С-концевых концов белков-мишеней. Это позволит в общей сложности восемь различных перестановок с тестированием взаимодействий:[1]

N-концевой фрагмент, слитый с N-концевым белком 1 + C-концевой фрагмент, слитый с N-концевым белком 2
N-концевой фрагмент, слитый с N-концевым белком 1 + C-концевой фрагмент, слитый с C-концевым белком 2
N-концевой фрагмент, слитый с C-концевым белком 1 + C-концевой фрагмент, слитый с N-концевым белком 2
N-концевой фрагмент, слитый с C-концевым белком 1 + C-концевой фрагмент, слитый с C-концевым белком 2
С-концевой фрагмент, слитый с N-концевым белком 1 + N-концевой фрагмент, слитый с N-концевым белком 2
С-концевой фрагмент, слитый с N-концевым белком 1 + N-концевой фрагмент, слитый с С-концевым белком 2
С-концевой фрагмент, слитый с С-концевым белком 1 + N-концевой фрагмент, слитый с N-концевым белком 2
С-концевой фрагмент, слитый с С-концевым белком 1 + N-концевой фрагмент, слитый с С-концевым белком 2

Выбор подходящей системы культивирования клеток

Как указывалось ранее, важно убедиться, что флуоресцентный репортерный белок, используемый в BiFC, является подходящим и может экспрессироваться в культура клеток система выбора, поскольку не все репортерные белки могут флуоресцировать или визуализироваться во всех модельные системы.

Выбор соответствующих элементов управления

Флуоресцентные фрагменты белка могут связываться и флуоресцировать с низкой эффективностью в отсутствие специфического взаимодействия. Поэтому важно включить контроль чтобы гарантировать, что флуоресценция от восстановления флуоресцентного репортерного белка не вызвана неспецифическим контактом.[13]

Некоторые элементы контроля включают фрагменты флуорофоров, связанные с невзаимодействующими белками, поскольку наличие этих слияний имеет тенденцию к снижению неспецифической комплементации и ложный положительный результат полученные результаты.[7]

Другой контроль создается путем связывания фрагмента флуоресцентного белка с белками с мутированными гранями взаимодействия.[8][12] Пока флуоресцентный фрагмент слит с мутированными белками таким же образом, как и белок дикого типа, и уровни экспрессии и локализация гена не зависят от мутация, это служит сильным отрицательным контролем, так как мутантные белки и, следовательно, флуоресцентные фрагменты не могут взаимодействовать.

Внутренний контроль также необходим для нормализации различий в эффективности трансфекции и экспрессии генов в разных клетках. Это достигается путем котрансфекции клеток плазмидами, кодирующими интересующие слитые белки, а также целым (нефрагментированным) белком, который флуоресцирует на длине волны, отличной от длины волны флуоресцентного репортерного белка. Во время визуализации определяют интенсивности флуоресценции комплекса BiFC и внутреннего контроля, которые после вычитания фонового сигнала становятся соотношением. Это соотношение представляет эффективность BiFC и может сравниваться с другими соотношениями для определения относительной эффективности образования различных комплексов.[10]

Трансфекция клеток

После того, как слитые белки и контроли были разработаны и созданы в их соответствующей системе экспрессии, плазмиды должны быть трансфицированный в исследуемые клетки. После трансфекции необходимо подождать, обычно около восьми часов, чтобы дать время для взаимодействия слитых белков и связывания их связанных фрагментов флуоресцентных репортерных белков и их флуоресценции.[8]

Визуализация и анализ

По прошествии достаточного времени для взаимодействия слитых белков и связанных с ними флуоресцентных фрагментов и флуоресценции клетки можно наблюдать под инвертированным флуоресцентным микроскопом, который может визуализировать флуоресценцию в клетках. Хотя интенсивность флуоресценции комплексов BiFC обычно составляет <10% от интенсивности, вызываемой экспрессией интактных флуоресцентных белков, чрезвычайно низкая автофлуоресценция в видимом диапазоне очень часто клетки часто создают сигнал BiFC на порядки выше, чем фоновая флуоресценция.[14]

Если флуоресценция обнаруживается, когда слитые белки экспрессируются, но отсутствует или значительно снижается после экспрессии мутировавшего отрицательного контроля, вполне вероятно, что между двумя интересующими целевыми белками происходит специфическое взаимодействие. Однако, если интенсивность флуоресценции не отличается значительно между мутированным слитым белком отрицательного контроля и его аналогом дикого типа, то флуоресценция, вероятно, вызвана неспецифическими взаимодействиями белков, поэтому следует проверить другую комбинацию конформаций слитого белка.

Если флуоресценция не обнаружена, взаимодействие между интересующими белками все еще может существовать, поскольку создание гибридного белка может изменить структуру или поверхность взаимодействия целевого белка, или фрагменты флуоресценции могут быть физически неспособны связываться. Чтобы гарантировать, что этот результат не ложноотрицательный, что взаимодействия нет, взаимодействие белков должно быть проверено в ситуации, когда для комплементации и активации флуоресценции требуется внешний сигнал. В этом случае, если внешний сигнал не может вызвать ассоциацию флуоресцентных фрагментов, вполне вероятно, что белки не взаимодействуют или существует физическое препятствие для комплементации флуоресценции.[10]

Сильные стороны

Соответствующий биологический контекст

Белки взаимодействуют с различными белками-партнерами и другими макромолекулами для достижения функций, которые поддерживают различные функции в клетках, которые поддерживают выживание организма. Идентификация этих взаимодействий может дать ключ к разгадке их влияния на клеточные процессы. Поскольку на эти взаимодействия могут влиять как внутренняя среда, так и внешние стимулы, изучение этих взаимодействий in vivo и на эндогенных уровнях, как рекомендуется в BiFC, обеспечивает физиологически релевантный контекст, из которого можно сделать выводы о взаимодействиях белков.

Прямая визуализация

BiFC позволяет прямую визуализацию взаимодействия белков в живых клетках с ограниченным количеством клеток. возмущение, а не полагаться на побочные эффекты или окрашивание экзогенный молекулы, которые могут не распределяться равномерно.[1] Это, а также возможность наблюдать живые клетки в течение длительных периодов времени, стало возможным благодаря сильной собственной флуоресценции восстановленного репортерного белка, что снижает вероятность неправильного считывания, связанного с процессом выделения белка.[1][15]

Чувствительность

В отличие от многих in vivo анализы взаимодействия белков, BiFC не требует, чтобы белковые комплексы образовывались большой долей белков или стехиометрический пропорции. Вместо этого BiFC может обнаруживать взаимодействия между белками субпопуляции, слабые взаимодействия и белки с низкой экспрессией из-за стабильной комплементации флуоресцентного репортерного белка.[11][16] Кроме того, сообщалось об успешном восстановлении флуоресцентного белка для белков-партнеров, находящихся на расстоянии более 7 нм друг от друга, при условии, что линкеры, связывающие фрагмент флуорофора с представляющим интерес белком, обладают гибкостью, необходимой для связывания с его соответствующим фрагментом.[13]Кроме того, сила белкового взаимодействия может быть количественно определена по изменению силы флуоресцентного сигнала.[2]

Пространственное разрешение

BiFC позволяет измерять пространственные и временные изменения в белковых комплексах, даже в ответ на активацию и ингибирование лекарств, а также внутриклеточно, обеспечивая максимальную Пространственное разрешение из in vivo анализ белок-белкового взаимодействия.[8][17][18]

Нет специализированного оборудования

BiFC не требует специального оборудования, так как визуализация возможна с помощью инвертированного флуоресцентного микроскопа, который может обнаруживать флуоресценцию в клетках.[13] Кроме того, анализ не требует сложной обработки данных или корректировки других источников флуоресценции.[8]

Структурная информация не требуется

BiFC может выполняться без структурной информации о партнерах по взаимодействию при условии, что фрагменты флуоресцентного репортерного белка могут ассоциироваться внутри комплекса, так как можно проводить скрининг нескольких комбинаций слитых белков. Это связано с предположением, что, поскольку функции белка повторяются в in vivo В контексте сложная структура будет напоминать структуру интактных белков, видимую физиологически.[14]

Несколько приложений

Технология BiFC была усовершенствована и расширена, чтобы включить возможности одновременно визуализировать несколько белковых комплексов в одной клетке, РНК / белковые взаимодействия, чтобы быстро обнаруживать изменения в путях передачи генов, демонстрировать скрытые фенотипы наркотиков, где прогнозируемый результат лечения (т.е. гибель клеток, дифференциация, морфологические изменения) не виден in vivo, изучать комплексообразование в разных клеточных компартментах, и для отображения поверхностей взаимодействия белков[12][18][19][20][21]

Ограничения

Обнаружение в реальном времени

Флуоресцентный сигнал вырабатывается только после взаимодействия белков, что обычно длится несколько часов. Следовательно, BiFC не может обеспечить обнаружение белковых взаимодействий в реальном времени. Задержка химических реакций с образованием флуорофора может также влиять на динамику сложных диссоциация и партнерский обмен.[1][7][8][22]

Необратимое образование BiFC

Образование комплекса BiFC является обратимым только на начальном этапе повторной сборки флуоресцентного репортерного белка, обычно в течение миллисекунд. Как только флюорохром был восстановлен, это практически необратимо. in vitro. Это предотвращает взаимодействие белков с другими и может нарушить ассоциацию / диссоциацию белковых комплексов в динамическое равновесие.[1]

Независимые ассоциации флуоресцентных белковых фрагментов

Флуоресцентные белковые фрагменты обладают ограниченной способностью связываться независимо от белков, с которыми они слиты. Хотя независимая от белка ассоциация будет варьироваться в зависимости от идентичности слитых белков и уровней их экспрессии, необходимо обеспечить необходимые и многочисленные элементы управления, чтобы различать истинные и ложноположительные взаимодействия белков. Как правило, это ограничение смягчается путем обеспечения экспрессии интересующих слитых белков в эндогенных концентрациях.[1]

Изменение структуры белка и стерические препятствия

Связывание флуоресцентных фрагментов может изменять укладку или структуру интересующего белка, что приводит к устранению сайта связывания на поверхности взаимодействующего белка. Кроме того, расположение флуоресцентных фрагментов может предотвратить восстановление флуорофора через стерическое препятствие, хотя стерические препятствия можно уменьшить или устранить, используя линкерную последовательность, которая обеспечивает достаточную гибкость для связывания флуоресцентных фрагментов. Следовательно, отсутствие комплементации флуоресценции может быть ложноотрицательным и не обязательно доказывает, что рассматриваемое взаимодействие не происходит.

Облигатные анаэробы

Из-за потребности в молекулярном кислороде для образования флуорофора BiFC нельзя использовать в облигатные анаэробы, которые не могут выжить в присутствии кислорода. Это ограничивает использование BiFC до аэробные организмы.[1]

Автофлуоресценция

Автофлуоресценция обычно не является проблемой, поскольку сигнал BiFC будет намного выше, чем фон.[23][24] Однако некоторые организмы, особенно апикомплекс, имеют более высокую автофлуоресценцию, что затрудняет применение в них BiFC.[25] Некоторые грибы, такие как грибковые микроорганизмы албиканс, также имеют высокий автофлуоресцентный фон, но BiFC часто все же можно проводить при использовании надлежащих контролей и штаммов.[26][27]

Использование гибридных белков

Поскольку эндогенные белки дикого типа невозможно визуализировать in vivoнеобходимо создать слитые белки и трансфицировать их плазмиды в исследуемые клетки. Эти слитые белки могут не воспроизводить функции, локализацию и взаимодействия, общие для их аналогов дикого типа, обеспечивая неточную картину рассматриваемых белков. Эту проблему можно облегчить, используя структурную информацию и расположение сайтов взаимодействия для рациональной идентификации сайтов слияния на интересующих белках, используя соответствующие контроли и сравнивая уровни экспрессии и функции слитых белков и белков дикого типа с помощью вестерн-блоттинга и функционального анализа. анализы.[1]

Температурная зависимость

Хотя низкие температуры способствуют восстановлению флуоресценции, когда фрагменты находятся в непосредственной близости, это может влиять на поведение целевых белков, приводя к неточным выводам относительно природы взаимодействия белков и их взаимодействующих партнеров.[16]

Точные отношения взаимодействия неизвестны

Поскольку восстановление флуорофора может происходить на расстоянии 7 нм или более, комплементация флуоресценции может указывать на прямое или косвенное (т.е. в пределах одного комплекса) взаимодействие между слитыми белками флуоресцентных фрагментов.[15]

Заявление

Помимо проверки взаимодействия белок-белок, описанной выше, BiFC был расширен и адаптирован для других приложений:

Сборка бактериальных рибосом

Система BiFC была применена для регистрации событий биогенеза рибосом в Кишечная палочка.[28] Процесс сборки рибосом включает зарождение рибосомных белков в правильном порядке и ориентации. Нарушения сборки могут приводить к структурным дефектам в субъединицах рибосом, которые в результате не могут соединяться в правильной ориентации с образованием полностью функциональных рибосом. Таким образом, события присоединения субъединиц, сигнализируемые появлением BiFC, являются простым способом мониторинга биогенеза рибосом в отличие от трудоемких методов профилирования полисом.

Разноцветная флуоресценция

Фрагменты флуоресцентного белка, используемые в BiFC, были расширены, чтобы включить цвета: синий, голубой, зеленый, желтый, красный, вишневый и Венера.[8][12][29][30] Эта цветовая гамма сделала возможной разработку комплементарного анализа многоцветной флуоресценции.[12] Этот метод позволяет одновременно визуализировать несколько белковых комплексов в одной и той же клетке. Кроме того, белки обычно имеют большое количество альтернативных партнеров по взаимодействию. Следовательно, путем слияния фрагментов разных флуоресцентных белков с белками-кандидатами можно изучать конкуренцию между альтернативными партнерами по взаимодействию для образования комплекса посредством комплементации различных флуоресцентных цветных фрагментов.[12]

РНК-связывающие белковые взаимодействия

BiFC был расширен, чтобы включить изучение взаимодействий РНК-связывающих белков в методе Рэкхема и Брауна, описанном как комплементация тримолекулярной флуоресценции (TriFC).[19] В этом методе фрагмент флуоресцентного белка Венеры сливается с мРНК представляющий интерес, и дополнительная часть Венеры слилась с РНК-связывающий белок представляет интерес. Подобно BiFC, если мРНК и белок взаимодействуют, белок Венеры будет восстановлен и флуоресцирует. Также известный как метод РНК-мостика, поскольку флуорофор и другие взаимодействующие белки образуют мост между белком и интересующей РНК, это позволяет просто обнаруживать и локализовать взаимодействия РНК-белок в живой клетке и обеспечивает простой метод обнаружения прямая или непрямая ассоциация РНК-белок (т.е. внутри комплекса), которая может быть проверена с помощью анализа очищенных соединений in vitro или РНКи сбить мостиковой молекулы (ей).[19]

Организация путей и каскады передачи сигналов

BiFC можно использовать для связывания генов друг с другом и их функции посредством измерения взаимодействий между белками, которые кодируют гены.[20][21] Это приложение идеально подходит для новых генов, о которых мало что известно об их генах. верхние и нижние эффекторы, поскольку могут быть созданы новые связи между путями. Кроме того, эффекты лекарств, гормоны, или же удаление или нокдаун интересующего гена, и последующие эффекты как на силу белок-белковых взаимодействий, так и на локализацию взаимодействия можно наблюдать в течение нескольких секунд.[17][18]

Комплексообразование в разных клеточных компартментах

BiFC использовался для изучения ядерная транслокация, через сложную локализацию, а также взаимодействия, включающие интегральные мембранные белки.[8][31][32][33][34][35][36][37] Таким образом, BiFC является важным инструментом для понимания локализации транскрипционного фактора в субклеточных компартментах.

Количественная оценка поверхностей взаимодействия белок-белок

BiFC был связан с проточной цитометрии (BiFC-FC). Это позволяет картировать поверхности межбелкового взаимодействия посредством введения ориентированный на сайт или случайные мутации, влияющие на формирование комплекса.[2]

Сравнение с другими технологиями

Большинство методов, используемых для изучения белок-белковых взаимодействий, основаны на in vitro методы. К сожалению, изучение белков в искусственной системе за пределами клеточного окружения сопряжено с рядом трудностей. Например, для этого может потребоваться удаление белков из их нормального клеточного окружения. Обработка, необходимая для выделения белка, может повлиять на его взаимодействие с другими белками. Кроме того, выделение белка из внутриклеточная передача сигналов и механизмы, которые происходят в нормальной клетке, могут дать ложную картину внутриклеточных и физиологических явлений.[1] Кроме того, белки, изученные in vitro, могут быть изучены при концентрациях, значительно отличающихся от их нормального уровня содержания, могут не обязательно эффективно транспортироваться в клетки или могут быть недостаточно селективными для функционирования в геноме хозяина.[38][39][40][41] Наконец, изучая белки in vitro, невозможно определить влияние специфических белок-белковых взаимодействий в клетке на функциональные или физиологические последствия.

Другой in vivo анализы, наиболее часто используемые для изучения межбелковых взаимодействий, включают флуоресцентный резонансный перенос энергии (FRET ) и дрожжевой двугибридный (Y2H ) проба. Каждый из этих тестов имеет свои преимущества и недостатки по сравнению с BiFC:

Флуоресцентный резонансный перенос энергии (FRET)

Флуоресцентный резонансный перенос энергии (FRET ), также известный как Фёрстеровский резонансный перенос энергии, резонансная передача энергии (RET ) или же электронная передача энергии (восточноевропейское время ), основан на передаче энергии от возбужденного (донор ) хромофор или же флуорофор (если хромофоры флуоресцентные) к ближайшему акцептор. В этом методе флуорофоры химически связаны или генетически слиты с двумя белками, которые предположительно взаимодействуют. Если белки взаимодействуют, это приведет к тому, что флуорофоры окажутся в непосредственной близости друг от друга. Если флуорофоры ориентированы таким образом, чтобы они открывали друг другу флуорофоры, что обычно обеспечивается при разработке и конструировании связи / слияния флуорофор-белок, тогда передача энергии от возбужденного донорного флуорофора приведет к изменению интенсивности флуоресценции или времени жизни флуорофоров.[1][13]

Дрожжи двугибридные (Y2H)

В дрожжевой двугибридный (Y2H ) - это метод генетического скрининга, который можно использовать для обнаружения физических (связывающих) белок-белковых или белок – ДНК взаимодействия. Обычно применяется в модельном дрожжевом организме. Saccharomyces cerevisiae. Он проверяет белок-приманку с (неизвестной) функцией, который слит, например, со связывающим доменом фактора транскрипции. GAL4 против потенциальных взаимодействующих белков или библиотеки кДНК, которые экспрессируют, например, домен активации GAL4 («жертва»).[42][43]

Сравнение технологий

Технология сравненияСходство с BiFCПреимуществаНедостатки
FRETСпособность обнаруживать и определять места взаимодействия белков в живых клетках.[13]Мгновенный мониторинг белковых взаимодействий в реальном времени
Это позволяет обнаруживать белки с короткоживущими ассоциациями.[16]

Обратимое взаимодействие флуорофора

Может быть обнаружена более сложная динамика взаимодействия (например, динамическое равновесие - непрерывное образование и диссоциация комплекса).[13][14]
Близость к пространству[44]
Потенциально взаимодействующие белки должны быть близко друг к другу, обычно в пределах 60–100 Å, чтобы произошла передача энергии. Напротив, воссоздание флуорофора BiFC возможно на расстоянии более 7 нм и требует только того, чтобы связь между фрагментом флуорофора и интересующим белком была достаточно гибкой, чтобы обеспечить ассоциацию.[16]

Пониженная чувствительность[44]

BiFC обычно более чувствителен из-за его стабильной белковой комплементации.Напротив, FRET вызывает фоновую флуоресценцию при возбуждении акцепторного флуорофора. Следовательно, необходимо проводить многочисленные проверки для количественной оценки изменения интенсивности флуоресценции в присутствии по сравнению с отсутствием передачи энергии между флуорофорами. Следовательно, с помощью FRET трудно обнаружить слабые взаимодействия.
FRET обычно требует более высоких уровней экспрессии генов для обнаружения передачи энергии, поскольку доля белков, которые образуют комплексы, должна быть достаточно высокой, чтобы вызвать заметное изменение интенсивности флуоресценции донора и акцептора.

Необратимое фотообесцвечивание[45][46][47]

Количественная оценка FRET требует необратимого фотообесцвечивание или же визуализация времени жизни флуоресценции который использует инструменты, которые не широко доступны. Это усложняет процесс визуализации, так как флуоресценция со временем разрушается светом, необходимым для возбуждения флуорофоров.
FRET: взаимодействие между белком А и белком В объединяет два флуоресцентных белка, и между двумя флуоресцентными белками происходит передача энергии.
Y2HВ естественных условиях техника, используемая для проверки взаимодействийЭкран генетического взаимодействия
Y2H обеспечивает in vivo методика изучения связывания факторов транскрипции на уровне последовательностей в эукариотический клетки
Предполагаемая связь приманка-жертва[13]
Связь между приманкой и добычей часто носит предварительный характер и зачастую неоднозначна, поскольку изучение сверхэкспрессированных гибридных белков в ядре дрожжей может привести к неспецифическим взаимодействиям и несовместимым системам (т.е. белки млекопитающих не всегда правильно экспрессируются в дрожжах. клетки, белки могут коэкспрессироваться неестественно).

Ошибочная активация транскрипции[13]

Репортерный ген может быть легко активирован транскрипцией, обеспечивая ложноположительное считывание взаимодействия белок-белок или белок-ДНК.

Генетическое дополнение[4][5]

Различные аллели одного и того же гена могут привести к генетической комплементации, что приведет к неточным взаимодействиям белок-ДНК.

Дрожжи как модельный организм[48][49]

Y2H имеет место в модельном организме. Saccharomyces cerevisiae, что затрудняет тестирование белков других (не дрожжевых) организмов, таких как растения, млекопитающие или организмы (например, грибковые микроорганизмы албиканс ) с использованием другого кодона, чем С. cerevisiae.

Сверхэкспрессия белков[15]

Y2H требует, чтобы белки были сверхэкспрессированы, что может исказить анализ данных, поскольку белки могут взаимодействовать с различными белками или ДНК при экспрессии на более высоком, чем обычно уровне, по сравнению с взаимодействиями, которые происходят на уровнях экспрессии эндогенных генов.

Ядерная локализация[15]

Y2H может использоваться только в ядре, где происходит активация транскрипции. Это одновременно удаляет белок из его физиологически релевантной среды, игнорируя роль нормального окружения белка во взаимодействиях с белками, и ограничивает обнаружение белками, которые активны в ядре.
Гибрид дрожжей-2: взаимодействие между протеином A и протеином B активирует транскрипцию

Рекомендации

  1. ^ а б c d е ж грамм час я j k л м Kerppola, T.K. Разработка и реализация анализов бимолекулярной флуоресценции (BiFC) для визуализации белковых взаимодействий в живых клетках. Nat. Protoc. 1. С. 1278–1286 (2006).
  2. ^ а б c Морелл, М., Эспаргаро, А., Авилес, Ф. X. и Вентура, С. Изучение и выбор белковых взаимодействий in vivo путем сочетания бимолекулярной флуоресцентной комплементации и проточной цитометрии. Nat. Protoc. 3, 22–33 (2008).
  3. ^ Ричардс, Ф. М. О ферментативной активности субтилизин-модифицированной рибонуклеазы. Proc. Natl. Акад. Sci. США. 44. С. 162–166 (1958).
  4. ^ а б Ullmann, A., Jacob, F. и Monod, J. Характеристика путем комплементации in vitro пептида, соответствующего проксимальному к оператору сегменту структурного гена бета-галактозидазы Escherichia coli. J. Mol. Биол. 24. С. 339–343 (1967).
  5. ^ а б Ульманн А., Якоб Ф. и Монод Дж. О структуре субъединиц дикого типа по сравнению с комплементированной бета-галактозидазой Escherichia coli. J. Mol. Биол. 32, 1–13 (1968).
  6. ^ Джонссон, Н. и Варшавский, А. Сплит убиквитин как сенсор взаимодействия белков in vivo. Proc. Natl. Акад. Sci. США. 91, 10340-10344 (1994).
  7. ^ а б c Гош И., Гамильтон А. Д. и Реган Л. Повторная сборка белка, направляемого антипараллельной лейциновой молнией: применение к зеленому флуоресцентному белку. Журнал Американского химического общества 122, 5658 (2000).
  8. ^ а б c d е ж грамм час я j k л Ху, К. Д., Чиненов, Ю. и Керппола, Т. К. Визуализация взаимодействий между белками семейства bZIP и Rel в живых клетках с использованием бимолекулярной флуоресцентной комплементации. Мол. Cell 9, 789–798 (2002).
  9. ^ Цзянь, Р. Ю. Зеленый флуоресцентный белок. Анну. Rev. Biochem. 67, 509–544 (1998).
  10. ^ а б c d е ж грамм час «Лаборатория Керппола».
  11. ^ а б Керппола, Т. К. Дополнительные методы исследования взаимодействия белков в живых клетках. Nat. Методы 3, 969–971 (2006).
  12. ^ а б c d е ж грамм Ху, К. Д. и Керппола, Т. К. Одновременная визуализация множественных белковых взаимодействий в живых клетках с использованием многоцветного флуоресцентного анализа комплементации. Nat. Biotechnol. 21. С. 539–545 (2003).
  13. ^ а б c d е ж грамм час Morell, M. et al. Мониторинг интерференции белок-белковых взаимодействий in vivo с помощью комплементации бимолекулярной флуоресценции: случай DnaK. Протеомика 8, 3433–3442 (2008).
  14. ^ а б c Kerppola, T. K. Анализ комплементации бимолекулярной флуоресценции (BiFC) как зонд взаимодействия белков в живых клетках. Анну. Rev. Biophys. 37, 465–487 (2008).
  15. ^ а б c d http://www.vanderbilt.edu/cbi
  16. ^ а б c d Fan, J. Y. et al. Split mCherry как новая система комплементации красной бимолекулярной флуоресценции для визуализации белок-белковых взаимодействий в живых клетках. Biochem. Биофиз. Res. Commun. 367, 47–53 (2008).
  17. ^ а б Мичник, С. В., Эр, П. Х., Мандерсон, Э. Н., Реми, И. и Стефан, Э. Универсальные стратегии исследований и открытия лекарств, основанные на анализах комплементации фрагментов белков. Nat. Rev. Drug Discov. 6. С. 569–582 (2007).
  18. ^ а б c MacDonald, M. L. et al. Выявление нецелевых эффектов и скрытых фенотипов лекарств в клетках человека. Nat. Chem. Биол. 2, 329–337 (2006).
  19. ^ а б c Рэкхэм, О. и Браун, С. М. Визуализация взаимодействий РНК-белок в живых клетках: FMRP и IMP1 взаимодействуют на мРНК. EMBO J. 23, 3346–3355 (2004).
  20. ^ а б Реми И., Уилсон И. А. и Мичник С. В. Активация рецептора эритропоэтина изменением конформации, вызванным лигандом. Science 283, 990–993 (1999).
  21. ^ а б Remy, I., Montmarquette, A. & Michnick, S. W. PKB / Akt модулирует передачу сигналов TGF-beta посредством прямого взаимодействия со Smad3. Nat. Cell Biol. 6. С. 358–365 (2004).
  22. ^ Magliery, T. J. et al. Обнаружение белок-белковых взаимодействий с помощью ловушки для повторной сборки фрагментов зеленого флуоресцентного белка: объем и механизм. Варенье. Chem. Soc. 127, 146–157 (2005).
  23. ^ Чен, Хонг; Видмер, Стефани; Ханиг, Саша; Энцерот, Рольф; Курт, Майкл (2013). «Развитие гамонтов и ооцист Eimeria nieschulzi (Coccidia, Apicomplexa) в первичных фетальных клетках крыс». Журнал паразитологических исследований. 2013: 591520. Дои:10.1155/2013/591520. ЧВК  3703804. PMID  23862053.
  24. ^ Керппола, Том К. (2008). «АНАЛИЗ БИМОЛЕКУЛЯРНОЙ ФЛУОРЕСЦЕНТНОЙ КОМПЛЕМЕНТАЦИИ (BiFC) КАК ИССЛЕДОВАНИЕ ВЗАИМОДЕЙСТВИЙ БЕЛКОВ В ЖИВЫХ КЛЕТКАХ». Ежегодный обзор биофизики. 37: 465–87. Дои:10.1146 / annurev.biophys.37.032807.125842. ЧВК  2829326. PMID  18573091.
  25. ^ Вареа, М; Клавель, А; Дойз, О; Castillo, F.J; Rubio, M.C; Гомес-Лус, Р. (1 декабря 1998 г.). «Флуоресценция и аутофлуоресценция фуксина в ооцистах Cryptosporidium, Isospora и Cyclospora». Международный журнал паразитологии. 28 (12): 1881–1883. Дои:10.1016 / S0020-7519 (98) 00146-5. ISSN  0020-7519. PMID  9925267.
  26. ^ Суботич, Ана; Суиннен, Эрвин; Демуайзер, Лисбет; Де Кеерсмакер, Херлинде; Мизуно, Хидеаки; Турну, Элен; Ван Дейк, Патрик (2017). "Инструмент комплементации бимолекулярной флуоресценции для идентификации белок-белковых взаимодействий у Candida albicans". G3: гены, геномы, генетика. 7 (10): 3509–3520. Дои:10.1534 / g3.117.300149. ЧВК  5633398. PMID  28860184.
  27. ^ Диас, Джакомо; Полонелли, Лучано; Конти, Стефания; Мессана, Ирэн; Кабрас, Тициана; Путцолу, Мартина; Фальчи, Анджела Мария; Фадда, Мария Элизабетта; Косентино, София; Изола, Рафаэлла (2005). «Митохондриальные изменения и аутофлуоресцентное преобразование Candida albicans, вызванные гистатинами». Микроскопические исследования и техника. 66 (5): 219–28. Дои:10.1002 / jemt.20161. PMID  15940680.
  28. ^ Шарма, Химаншу; Ананд, Баскаран (7 июля 2016 г.). «Бимолекулярная комплементация флуоресценции позволяет легко обнаруживать дефекты сборки рибосом у Escherichia coli». РНК Биология. 13 (9): 872–882. Дои:10.1080/15476286.2016.1207037. ЧВК  5014008. PMID  27388791.
  29. ^ Jach, G .; Pesch, M .; Richter, K .; Frings, S .; Уриг, Дж. Ф. Улучшенный mRFP1 добавляет красный цвет к комплементации бимолекулярной флуоресценции. Nat. Методы. 3, 597–600 (2006)
  30. ^ Шю Ю.Дж., Лю Х., Дэн Х., Ху Ц.Д. Идентификация новых флуоресцентных белковых фрагментов для бимолекулярного флуоресцентного анализа комплементации в физиологических условиях. Биотехнологии. 40, 61–66 (2006).
  31. ^ де Вирджилио, М., Киосс, В. Б. и Шаттил, С. Дж. Проксимальные, селективные и динамические взаимодействия между интегрином альфа IIbbeta3 и протеинтирозинкиназами в живых клетках. J. Cell Biol. 165, 305–311 (2004).
  32. ^ Тонг, Э. Х. и др. Регуляция ядерно-цитоплазматического переноса транскрипционного фактора OREBP / TonEBP / NFAT5. J. Biol. Chem. 281, 23870-23879 (2006).
  33. ^ Лопес-Гименес, Дж. Ф., Каналс, М., Педиани, Дж. Д. и Миллиган, Г. Альфа1b-адренорецептор существует в виде олигомера более высокого порядка: для созревания рецептора, доставки на поверхность и функции требуется эффективная олигомеризация. Мол. Pharmacol. 71, 1015–1029 (2007).
  34. ^ Накахара, С., Хоган, В., Инохара, Х. и Раз, А. Импортин-опосредованная ядерная транслокация галектина-3. J. Biol. Chem. 281, 39649-39659 (2006).
  35. ^ Лю, Х. и др. Взаимная регуляция c-Jun и ATF2 посредством активации транскрипции и субклеточной локализации. EMBO J. 25, 1058–1069 (2006).
  36. ^ Gwozdz, T. et al. EcR и Usp, компоненты комплекса ядерных рецепторов экдистероидов, обнаруживают дифференциальное распределение молекулярных детерминант, управляющих субклеточным трафиком. Клетка. Сигнал. 19, 490–503 (2007).
  37. ^ Fan, M., Ahmed, K.M, Coleman, M.C., Spitz, D.R. & Li, J. J. Ядерный фактор-каппаB и супероксиддисмутаза марганца опосредуют адаптивную радиорезистентность в эпителиальных клетках кожи мышей, облученных низкими дозами. Cancer Res. 67, 3220–3228 (2007).
  38. ^ Ву, П., Даниэль-Иссакани, С., ЛаМарко, К. и Струловичи, Б. Автоматический высокопроизводительный анализ фильтрации: применение для идентификации ингибитора полимеразы. Анальный. Biochem. 245, 226–230 (1997).
  39. ^ Стоивсандт, О. и Брок, Р. Одноэтапный анализ белковых комплексов в микролитрах клеточного лизата с использованием непрямой иммуномеченой и кросс-корреляционной спектроскопии флуоресценции. Nat. Protoc. 1. С. 223–229 (2006).
  40. ^ Бергендаль В., Хейдук Т. и Берджесс Р. Р. Высокопроизводительный скрининговый анализ на основе резонансного переноса энергии люминесценции на ингибиторы основных белок-белковых взаимодействий в бактериальной РНК-полимеразе. Appl. Environ. Microbiol. 69, 1492–1498 (2003).
  41. ^ Ян, П. и др. Мультиплексное обнаружение белок-пептидного взаимодействия и ингибирование с помощью капиллярного электрофореза. Анальный. Chem. 79, 1690–1695 (2007).
  42. ^ Филдс, С. и Сонг, О. Новая генетическая система для обнаружения белок-белковых взаимодействий. Nature 340, 245–246 (1989).
  43. ^ Stynen, B; Tournu, H; Тавернье, Дж; Ван Дейк, П. (июнь 2012 г.). «Разнообразие генетических методов in vivo для изучения взаимодействия белок-белок: от дрожжевой двугибридной системы до сплит-люциферазной системы млекопитающих». Обзоры микробиологии и молекулярной биологии. 76 (2): 331–82. Дои:10.1128 / MMBR.05021-11. ЧВК  3372256. PMID  22688816.
  44. ^ а б Керппола, Т. К. Визуализация молекулярных взаимодействий с помощью флуоресцентной комплементации. Nat. Преподобный Мол. Cell Biol. 7. С. 449–456 (2006).
  45. ^ Creemers, T.M., Lock, A.J., Subramaniam, V., Jovin, T.M. и Volker, S. Фотофизика и оптическое переключение в мутантах зеленого флуоресцентного белка. Proc. Natl. Акад. Sci. США. 97, 2974–2978 (2000).
  46. ^ Терских, А. и др. «Флуоресцентный таймер»: белок, меняющий цвет со временем. Science 290, 1585–1588 (2000).
  47. ^ ван Тор, Дж. Дж., Генш, Т., Хеллингверф, К. Дж. и Джонсон, Л. Н. Фототрансформация зеленого флуоресцентного белка УФ и видимым светом приводит к декарбоксилированию глутамата 222. Nat. Struct. Биол. 9. С. 37–41 (2002).
  48. ^ Stynen, B; Tournu, H; Тавернье, Дж; Ван Дейк, П. (июнь 2012 г.). «Разнообразие генетических методов in vivo для изучения взаимодействия белок-белок: от дрожжевой двугибридной системы до сплит-люциферазной системы млекопитающих». Обзоры микробиологии и молекулярной биологии. 76 (2): 331–82. Дои:10.1128 / MMBR.05021-11. ЧВК  3372256. PMID  22688816.
  49. ^ Schoeters, F; Ван Дейк, П. (2019). «Белковые взаимодействия в грибковые микроорганизмы албиканс". Границы микробиологии. 10: 1792. Дои:10.3389 / fmicb.2019.01792. ЧВК  6693483. PMID  31440220.

внешняя ссылка