Нервный проводник - Nerve guidance conduit

А нервный проводник (также называемый искусственный нервный провод или же искусственный нервный трансплантат, в отличие от аутотрансплантат ) является искусственным средством направления роста аксонов для облегчения регенерация нервов и является одним из нескольких клинических методов лечения травмы нервов. Когда прямо наложение швов двух культи перерезанного нерва невозможно без натяжения, стандартное клиническое лечение периферический нерв травмы аутологичного нерва прививка. Из-за ограниченного доступа к донорской ткани и функционального восстановления при трансплантации аутологичного нерва, инженерия нервной ткани Исследования были сосредоточены на разработке биоискусственных нервных проводников в качестве альтернативного лечения, особенно при больших дефектах. Подобные методы также исследуются для восстановления нервов в спинном мозге, но регенерация нервов в спинном мозге Центральная нервная система представляет собой большую проблему, потому что его аксоны не регенерируют в значительной степени в естественной среде.^[1]

Создание искусственных трубопроводов также известно как энтубация потому что нервные окончания и промежуточная щель заключены в трубку, состоящую из биологических или синтетических материалов.^[2] Независимо от того, имеет ли канал форму биологической трубки, синтетической трубки или тканевого канала, он должен способствовать нейротропной и нейротрофической связи между проксимальным и дистальным концом нервной щели, блокировать внешние тормозящие факторы и обеспечивать физическое руководство для аксонов. отрастание.^[3] Самая основная задача канала для наведения нервов - объединить физические, химические и биологические сигналы в условиях, которые будут способствовать формированию ткани.^[4]

Материалы, которые использовались для изготовления биологических трубок, включают кровеносные сосуды и скелетные мышцы, в то время как неабсорбируемые и биоабсорбируемые синтетические трубки были сделаны из силикон и полигликолид соответственно.^[5] Тканевые проводники для направления нервов представляют собой комбинацию многих элементов: структуры каркаса, материала каркаса, клеточной терапии, нейротрофические факторы и биомиметик материалы. Выбор того, какие физические, химические и биологические сигналы использовать, основан на свойствах нервной среды, которая имеет решающее значение для создания наиболее желательной среды для регенерации аксонов. Факторы, влияющие на выбор материала, включают: биосовместимость, биоразлагаемость,^[6] механическая целостность,^[3] управляемость при росте нервов, имплантации и стерилизации.

Топография лесов

В тканевая инженерия, тремя основными уровнями конструкции лесов считаются:

• надстройка, общая форма подмостей;
• микроструктура, ячеистая структура поверхности; и
• наноструктура, структура субклеточного уровня поверхности.^[7]

Надстройка

Надстройка кабелепровода или строительных лесов важна для моделирования in vivo условия для формирования нервной ткани. Внеклеточный матрикс, который в основном отвечает за направление роста и формирования ткани, имеет сложную надстройку, созданную множеством переплетенных волокнистых молекул. Способы формирования искусственной надстройки включают использование термочувствительных гидрогелей, продольно ориентированных каналов, продольно ориентированных волокон, растянутых аксонов и нановолоконных каркасов.

Термочувствительные гидрогели

В травматическое повреждение мозга (TBI), запускается серия повреждающих событий, которые приводят к гибели клеток и общей дисфункции, которые вызывают образование полости неправильной формы.^[8] Образовавшаяся полость вызывает много проблем для каркасов тканевой инженерии, поскольку требуется инвазивная имплантация, и часто каркас не соответствует форме полости. Чтобы обойти эти трудности, термочувствительные гидрогели были разработаны, чтобы претерпевать переходы раствор-гелеобразование (золь-гель), которые вызваны разницей в комнатных и физиологических температурах, чтобы облегчить имплантацию за счет гелеобразования in situ и согласования с формой полости, что позволяет вводить их минимально инвазивным способом .^[8]

Метилцеллюлоза (MC) - это материал с четко выраженными переходами золь-гель в оптимальном диапазоне температур. Гелеобразование MC происходит из-за усиления внутри- и межмолекулярных гидрофобных взаимодействий при повышении температуры.^[8] Переход золь-гель определяется более низкой критической температурой раствора (НКТР), которая является температурой, при которой модуль упругости равен модулю вязкости. НКТР не должна превышать физиологическую температуру (37 ° C), если каркас должен образовывать гель при имплантации, создавая минимально инвазивную доставку. После имплантации в полость поражения TBI или в канал для направления периферических нервов MC вызывает минимальную воспалительную реакцию.^[8] Для малоинвазивной доставки также очень важно, чтобы раствор MC имел вязкость при температурах ниже его НКТР, что позволяет вводить его через иглу небольшого калибра для имплантации в in vivo Приложения.^[8] MC успешно использовался в качестве средства доставки для интраоптической и пероральной фармацевтической терапии.^[8] Некоторые недостатки MC включают его ограниченную склонность к адсорбции белка и адгезии нейрональных клеток, что делает его небиоактивным гидрогелем. Из-за этих недостатков использование MC для регенерации нервной ткани требует присоединения биологически активной группы к основному полимеру для усиления клеточной адгезии.

Еще один термочувствительный гель образуется путем сочетания хитозан с солью глицерофосфата (GP).^[9] Этот раствор загустевает при температуре выше 37 ° C. Гелеобразование хитозана / GP происходит довольно медленно: для первоначального застывания требуется полчаса и еще 9 часов для полной стабилизации. Прочность геля колеблется от 67 до 1572 Па в зависимости от концентрации хитозана; нижний предел этого диапазона приближается к жесткости ткани мозга. Хитозан / GP показал успех in vitro, но добавление полилизин необходим для усиления прикрепления нервных клеток. Полилизин был ковалентно связан с хитозаном, чтобы предотвратить его диффузию. Полилизин был выбран из-за его положительной природы и высокой гидрофильности, что способствует нейрит рост. Выживаемость нейронов увеличилась вдвое, хотя рост нейритов не изменился при добавлении полилизина.^[9]

Продольно ориентированные каналы

Продольно ориентированные каналы - это макроскопические структуры, которые могут быть добавлены к каналу, чтобы дать регенерирующим аксонам четко определенную направляющую для роста прямо вдоль каркаса. В эшафоте с микротрубчатый Архитектура канала, регенерирующие аксоны способны проходить через открытые продольные каналы, как они обычно проходят через эндоневральные трубки периферических нервов.^[10] Кроме того, каналы увеличивают площадь поверхности, доступную для контакта с ячейками. Каналы обычно создаются путем введения иглы, проволоки или второго раствора полимера в полимерный каркас; после стабилизации формы основного полимера иглу, проволоку или второй полимер удаляют, чтобы сформировать каналы. Обычно создается несколько каналов; однако каркас может состоять только из одного большого канала, который представляет собой просто одну полую трубу.

Техника формования была создана Ван и др. для формирования канала для направления нервов с многоканальным внутренним матриксом и внешней стенкой трубки из хитозана.^[10] В своем исследовании 2006 года Wang et al. продевают иглы для акупунктуры через полую хитозановую трубку, где они удерживаются на месте, фиксируя с обоих концов пластыри, созданные с помощью CAD. Затем в трубку вводят раствор хитозана, который затвердевает, после чего иглы удаляются, создавая продольно ориентированные каналы. Затем был создан репрезентативный каркас для характеристики с 21 каналом с использованием игл для акупунктуры диаметром 400 мкм. При исследовании под микроскопом было обнаружено, что каналы имеют приблизительно круглую форму с небольшими неровностями; все каналы были выровнены по внутреннему диаметру внешней стенки трубы. С помощью микро-КТ было подтверждено, что каналы проходят по всей длине каркаса. При водопоглощении внутренний и внешний диаметры каркаса становились больше, но диаметры каналов существенно не менялись, что необходимо для поддержания формы каркаса, которая направляет расширение нейритов. Внутренняя структура обеспечивает увеличение прочности на сжатие по сравнению с одной только полой трубкой, что может предотвратить обрушение каркаса на растущие нейриты. Клетки Neuro-2a могли расти на внутренней матрице каркаса, и они ориентировались вдоль каналов. Хотя этот метод был протестирован только на хитозане, он может быть адаптирован для других материалов.^[10]

лиофилизация и процесс нагрева проволоки - еще один метод создания продольно ориентированных каналов, разработанный Huang et al. (2005).^[11] Хитозан и уксусная кислота раствор был заморожен вокруг никель-медных (Ni-Cu) проводов в жидкий азот ловушка; впоследствии провода были нагреты и удалены. Провода Ni-Cu были выбраны потому, что они обладают высоким уровнем сопротивления. Лиофилизаторы с контролируемой температурой использовались для сублимации уксусной кислоты. Не было никаких свидетельств слияния или разделения каналов. После лиофилизации размеры каркаса уменьшились, в результате чего каналы стали немного меньше используемой проволоки. Каркасы нейтрализовали до физиологического значения pH с использованием основания, которое оказало сильное влияние на пористую структуру.^[11] Более слабые основания сохраняли однородность пористой структуры, но более сильные основания делали ее неуправляемой. Используемая здесь техника может быть немного изменена для использования с другими полимерами и растворителями.^[11]

Другой способ создания продольно ориентированных каналов - это создание канала из одного полимера с заделанными продольно ориентированными волокнами из другого полимера; затем выборочно растворяют волокна с образованием продольно ориентированных каналов. Поликапролактон (PCL) волокна были встроены в (Гидроксиэтил) метакрилат (НЕМА) каркас. PCL был выбран вместо поли (молочной кислоты) (PLA) и сополимера молочной и гликолевой кислоты (PLGA), поскольку он нерастворим в HEMA, но растворим в ацетон. Это важно, потому что HEMA использовался в качестве основного материала трубопровода, а ацетон использовался для избирательного растворения полимерных волокон. Экструдированные волокна PCL вставляли в стеклянную трубку и вводили раствор HEMA. Количество созданных каналов было постоянным от партии к партии, и различия в диаметре волокна можно было уменьшить, создав более управляемую систему экструзии волокна PCL.^[12] Было подтверждено, что сформированные каналы являются непрерывными и однородными при исследовании изменений пористости. Этот процесс безопасен, воспроизводим и имеет контролируемые размеры.^[12] В аналогичном исследовании, проведенном Yu и Shoichet (2005), HEMA сополимеризовали с AEMA для создания геля P (HEMA-co-AMEA). Волокна поликапролактона (PCL) были внедрены в гель, а затем выборочно растворены ацетоном с обработкой ультразвуком для создания каналов. Было обнаружено, что HEMA в смеси с 1% AEMA создает самые прочные гели.^[13] По сравнению с каркасами без каналов добавление 82–132 каналов может обеспечить примерно 6–9-кратное увеличение площади поверхности, что может быть полезно для исследований регенерации, которые зависят от опосредованных контактом сигналов.^[13]

Itoh et al. (2003) разработали каркас, состоящий из одного большого продольно ориентированного канала, созданного с использованием хитозановых сухожилий крабов.^[14] Сухожилия собирали у крабов (Macrocheira kaempferi) и многократно промывали раствором гидроксида натрия для удаления белков и деацетилирования сухожилий. хитин, который впоследствии стал известен как хитозан сухожилий. Пруток из нержавеющей стали с треугольным поперечным сечением (каждая сторона длиной 2,1 мм) вставляли в полую жильную хитозановую трубку круглого сечения (диаметр: 2 мм; длина: 15 мм). При сравнении трубок круглой и треугольной формы было обнаружено, что треугольные трубки имеют улучшенную механическую прочность, лучше сохраняют свою форму и увеличивают доступную площадь поверхности.^[14] Хотя это эффективный метод создания одного канала, он не обеспечивает такой большой площади поверхности для роста клеток, как многоканальные каркасы.

Newman et al. (2006) вставили проводящие и непроводящие волокна в каркас коллаген-TERP (коллаген, поперечно связанный с терполимер поли (N-изопропилакриламида) (PNiPAAm)). Волокна встраивали, плотно оборачивая их на маленькое предметное стекло и помещая раствор коллагена-TERP между ним и другим предметным стеклом; прокладки между предметными стеклами устанавливают толщину геля 800 мкм. Проводящими волокнами были углеродное волокно и Кевлар, а непроводящими волокнами были нейлон-6 и вольфрамовая проволока. Нейриты распространяются во всех направлениях толстыми пучками на углеродном волокне; однако с другими тремя волокнами нейриты простираются в тонких сетчатых формах. Нейриты не показали направленного роста на углеродных и кевларовых волокнах, но они выросли вдоль волокон нейлона-6 и в некоторой степени вдоль вольфрамовой проволоки. В вольфрамовой проволоке и каркасах из волокна нейлон-6 нейриты врастали в гель рядом с границей раздела волокно-гель в дополнение к росту вдоль поверхности. Все волокнистые гели, кроме кевлара, показали значительное увеличение роста нейритов по сравнению с гелями без волокон. Не было различий в разрастании нейритов между непроводящими и проводящими волокнами.^[15]

В своем исследовании 2005 года Cai et al. добавлены микрофиламенты из поли (L-молочной кислоты) (PLLA) в полые поли (молочная кислота) (PLA) и силиконовые трубки. Характеристики направления микроволокна были обратно пропорциональны диаметру волокна, при этом меньшие диаметры способствовали лучшей продольно ориентированной миграции клеток и регенерации аксонов. Микроволокна также способствовали миелинизации во время восстановления периферических нервов.^[16]

Растянутые аксоны

Было продемонстрировано, что зрелые тракты аксонов испытывают рост при механическом растяжении в центральной части цилиндра аксона.^[17] Такое механическое растяжение применялось специальным биореактором растяжения-роста аксонов, состоящим из четырех основных компонентов: специально разработанной камеры расширения аксонов, стола линейного перемещения, шагового двигателя и контроллера.^[17] Культура нервной ткани помещается в камеру расширения с портом для газообмена и съемной растягивающейся рамкой, которая способна разделять две группы сом (тела нейронных клеток) и, таким образом, растягивать их аксоны.^[17] Коллагеновый гель использовался для стимулирования роста более крупных трактов аксонов, которые были видны невооруженным глазом. Существует две причины усиления роста из-за коллагенового покрытия: 1) культура стала гидрофобной после высыхания коллагена, что позволило более плотной концентрации нейронов расти, и 2) коллагеновое покрытие создало беспрепятственное покрытие на двух субстратах для удлинения. .^[17] Осмотр растровый электронный микроскоп и ТЕМ не было никаких признаков истончения аксонов из-за растяжения, а цитоскелет оказался нормальным и неповрежденным. Растянутые тракты аксонов культивировали на биосовместимой мембране, которая могла быть непосредственно сформирована в цилиндрическую структуру для трансплантации, устраняя необходимость переноса аксонов на каркас после завершения роста. Выращенные аксоны были способны расти с беспрецедентной скоростью 1 см / день всего за 8 дней акклиматизации, что намного превышает максимальную скорость роста 1 мм / день, измеренную для удлинения конуса роста. Скорость 1 мм / день также является средней скоростью транспортировки структурных элементов, таких как нейрофиламенты.^[17]

Каркасы из нановолокон

Исследования наноразмерных волокон пытаются имитировать in vivo внеклеточная среда, чтобы способствовать направленному росту и регенерации.^[7] Три различных метода формирования нановолоконных каркасов - это самосборка, разделение фаз и электроспиннинг. Однако существует множество других методов формирования каркасов из нановолокна.

Самостоятельная сборка нановолоконных каркасов возможна только тогда, когда сами волокна спроектированы для самосборки. Одним из распространенных способов стимулирования самосборки волокон каркаса является использование амфифильных пептидов, так что в воде гидрофобная часть управляет самосборкой.^[7] Тщательно рассчитанная инженерия амфифильных пептидов позволяет точно контролировать самособирающийся матрикс. Самостоятельная сборка позволяет создавать как упорядоченные, так и неупорядоченные топографии. Филлипс и др. (2005) разработан и протестирован in vitro и in vivo самодостаточный коллаген -Шванновская ячейка матрица, которая позволила выравнивать удлинение нейритов DRG in vitro. Коллагеновые гели широко используются в качестве подложек для трехмерных изображений. культура ткани. Клетки способны образовывать опосредованные интегрином соединения с коллагеном, который инициирует сборку цитоскелета и подвижность клеток. Когда клетки движутся по коллагеновым волокнам, они создают силы, сжимающие гель. Когда волокна коллагена связаны с обоих концов, силы, генерируемые клетками, создают одноосное напряжение, заставляя клетки и волокна коллагена выравниваться. Преимущества этой матрицы - простота и скорость приготовления.^[2] Растворимая плазма фибронектин может также самоорганизовываться в стабильные нерастворимые волокна при воздействии прямого механического сдвига в вязком растворе. Филлипс и др. (2004) исследовали новый метод сдвигового агрегирования, который вызывает улучшенное агрегирование.^[18] Механическое разрезание создавали путем вытягивания болюса 0,2 мл на 3 см с помощью щипцов; фибронектин объединяется в нерастворимые волокна на быстро движущейся границе раздела в ячейке для ультрафильтрации. Предлагаемый механизм этой агрегации волокон - это удлинение и удлинение белка под действием механической силы сдвига, что приводит к боковой упаковке и агрегации белков в волокнах. Филлипс и др. показали, что механический сдвиг, вызванный растяжением высоковязкого геля фибронектина, вызывает существенные изменения в его структуре и что при нанесении посредством одноосного растяжения вязкий гель фибронектина образует ориентированные волокнистые агрегаты фибронектина; кроме того, волокнистые агрегаты имеют пониженную растворимость и могут поддерживать различные типы клеток in vitro.^[18]

Разделение фаз позволяет создавать трехмерные субмикрометровые волокнистые каркасы без использования специального оборудования. Пять этапов фазового разделения - это растворение полимера, фазовое разделение и гелеобразование, экстракция растворителем из геля, замораживание и сублимационная сушка в воде.^[7] Конечный продукт - это непрерывная волоконная сеть. Разделение фаз можно модифицировать для соответствия многим различным применениям, а структуру пор можно изменять с помощью различных растворителей, что может изменить весь процесс с жидкого-жидкого на твердое-жидкое. Пористость и диаметр волокна также могут быть изменены путем изменения начальной концентрации полимера; более высокая начальная концентрация приводит к уменьшению пор и большему диаметру волокон. Этот метод может использоваться для создания сетей волокон с диаметром, достигающим диаметра коллагеновых волокон типа I. Созданная волокнистая сеть ориентирована случайным образом, и до сих пор не проводилось никаких работ по организации волокон. Разделение фаз - это широко используемый метод для легкого создания высокопористых нановолоконных каркасов.^[7]

Электропрядение обеспечивает надежную платформу для разработки синтетических нервных проводников. Электропрядение может служить для создания каркасов контролируемых размеров с различным химическим составом и топографией. Кроме того, в волокна могут быть заключены различные материалы, включая частицы, факторы роста и даже клетки.^[19] Электропрядение создает волокна, электрически заряжая каплю полимерного расплава или раствора и подвешивая ее в капилляре. Затем к одному концу капилляра прикладывают электрическое поле до тех пор, пока заряд не превысит поверхностное натяжение, создавая струю полимера, которая удлиняется и истончается. Эта полимерная струя выходит в виде конуса Тейлора, оставляя электрически заряженные полимеры, которые собираются на заземленной поверхности в качестве растворителя по мере того, как растворитель испаряется из струй.^[20] Волокна были спрядены с диаметром от менее 3 нм до более 1 мкм. На процесс влияют параметры системы, такие как тип полимера, молекулярная масса полимера и свойства раствора, а также параметры процесса, такие как скорость потока, напряжение, диаметр капилляра, расстояние между коллектором и капилляром и движение коллектора.^[21] Созданная волокнистая сетка неупорядочена и имеет высокое отношение площади поверхности к объему в результате высокой пористости; большая площадь поверхности сети идеальна для роста и транспортировки отходов и питательных веществ при инженерии нервных тканей.^[7] Две особенности электроспрядных каркасов, которые являются выгодными для инженерии нервной ткани, - это морфология и архитектура, которые близко имитируют ECM, и поры, которые представляют собой правильный диапазон размеров, который обеспечивает обмен питательными веществами, но предотвращает рост глиальной рубцовой ткани (около 10 мкм).^[22] Было продемонстрировано, что беспорядочные электроспряденные каркасы из PLLA обладают повышенной адгезией клеток, что может быть связано с повышенной шероховатостью поверхности.^[22] Также было показано, что химически модифицированные маты из электропряденого волокна влияют на дифференцировку нервных стволовых клеток и увеличивают пролиферацию клеток.^[20] За последнее десятилетие ученые также разработали многочисленные методы производства выровненных каркасов из нановолокон, которые служат дополнительными топографическими ориентирами для клеток.^[23] Это является преимуществом, поскольку крупномасштабные трехмерные выровненные каркасы не могут быть легко созданы с использованием традиционных технологий изготовления.^[7] В исследовании, проведенном Yang et al. (2005) были созданы, охарактеризованы и сравнены выровненные и беспорядочные электропряденые микроволоконные и нановолоконные каркасы из поли (L-молочной кислоты) (PLLA). Диаметр волокна был прямо пропорционален исходной концентрации полимера, используемого для электроспиннинга; средний диаметр выровненных волокон был меньше, чем у случайных волокон при идентичных условиях обработки. Было показано, что нейральные стволовые клетки вытянуты параллельно выровненным электроспрядным волокнам.^[21] Выровненные нановолокна имели более длинную среднюю длину нейритов по сравнению с выровненными микроволокнами, случайными микроволокнами и случайными нановолокнами. Кроме того, на выровненных нановолокнах дифференцировалось больше клеток, чем на выровненных микроволокнах.^[21] Таким образом, результаты этого исследования показали, что выровненные нановолокна могут быть более полезными, чем невыровненные волокна или микроволокна для стимуляции регенерации нервов.

Микроструктура и наноструктура

Микроструктура и наноструктура, а также надстройка - это три основных уровня структуры каркаса, которые заслуживают рассмотрения при создании топографии каркаса.^[7] В то время как надстройка относится к общей форме каркаса, микроструктура относится к структуре клеточного уровня поверхности, а наноструктура относится к структуре субклеточного уровня поверхности. Все три уровня структуры способны вызывать клеточные ответы; однако существует значительный интерес к ответу клеток на наноразмерную топографию, мотивированную наличием множества наноразмерных структур внутри внеклеточного матрикса.^[7] Растет число методов изготовления микро- и наноструктур (многие из которых происходят из полупроводниковой промышленности), позволяющих создавать различные топографии с контролируемым размером, формой и химическим составом.^[24]

Физические подсказки

Физические подсказки формируются путем создания упорядоченной поверхностной структуры на уровне микроструктуры и / или наноструктуры. Было показано, что физические сигналы на наноуровне модулируют клеточную адгезию, миграцию, ориентацию, контактное ингибирование, экспрессию генов и формирование цитоскелета. Это позволяет управлять клеточными процессами, такими как пролиферация, дифференциация и распространение.^[24] Существует множество методов создания микро- и наноразмерных топографий, которые можно разделить на те, которые создают упорядоченные топографии, и те, которые создают неупорядоченные топографии.

Заказанные топографии определяются как шаблоны, которые организованы и геометрически точны.^[7] Хотя существует множество методов создания упорядоченных топографий, они обычно требуют много времени, навыков и опыта, а также использования дорогостоящего оборудования.^[7]

Фотолитография включает экспонирование источника света на кремниевой пластине, покрытой фоторезистом; маска с желаемым рисунком помещается между источником света и пластиной, тем самым избирательно позволяя свету фильтровать и создавать узор на фоторезист. Дальнейшая разработка пластины позволяет выявить узор на фоторезисте. Фотолитография, выполняемая в ближнем УФ-диапазоне, часто рассматривается как стандарт для создания топографий в микромасштабе.^[7] Однако, поскольку нижний предел размера является функцией длины волны, этот метод нельзя использовать для создания наноразмерных элементов.^[7] В своем исследовании 2005 года Mahoney et al. созданы организованные массивы полиимид Каналы (11 мкм в высоту и 20–60 мкм в ширину) создавались на стеклянной подложке методом фотолитографии.^[25] Полиимид был использован потому, что он хорошо прилипает к стеклу, химически стабилен в водном растворе и биосовместим. Предполагается, что микроканалы ограничивают диапазон углов, под которыми цитоскелетные элементы внутри конусов роста нейритов могут накапливаться, собираться и ориентироваться.^[25] Было значительное уменьшение количества нейритов, выходящих из сомы; тем не менее, уменьшение было меньше, поскольку диапазон углов, под которыми выходили нейриты, увеличивался. Кроме того, нейриты были в среднем в два раза длиннее, когда нейроны культивировали на микроканалах, по сравнению с контролем на плоской поверхности; это могло быть связано с более эффективным выравниванием нитей.^[25]

В электронно-лучевая литография (EBL) электронно-чувствительный резист подвергается воздействию пучка высокоэнергетических электронов. Есть выбор резиста положительного или отрицательного типа; однако более низкое разрешение элемента может быть получено с отрицательными резистами.^[26] Узоры создаются путем программирования пучка электронов для точного следования по поверхности материала. На разрешение влияют другие факторы, такие как рассеяние электронов в резисте и обратное рассеяние от подложки. EBL может создавать отдельные поверхностные элементы размером порядка 3–5 нм. Если требуется несколько элементов на большой площади поверхности, как в случае тканевой инженерии, разрешение падает, и элементы могут быть созданы только на 30–40 нм, и проявление резиста начинает оказывать большее влияние на формирование рисунка.^[26] Чтобы предотвратить растворение резиста, можно использовать ультразвуковое перемешивание для преодоления межмолекулярных сил. Кроме того, изопропиловый спирт (IPA) помогает разрабатывать массивы высокой плотности. EBL может стать более быстрым и менее дорогостоящим процессом за счет воспроизведения нанометрового рисунка в полимерных материалах; процесс репликации был продемонстрирован с поликапролактоном (PCL) с использованием горячего тиснения и литье из растворителя.^[7] В исследовании, проведенном Gomez et al. (2007), было показано, что микроканалы шириной 1 и 2 мкм и глубиной 400 и 800 нм, созданные EBL на PDMS, усиливают образование аксонов клеток гиппокампа в культуре в большей степени, чем иммобилизованные химические сигналы.^[26]

Рентгеновская литография это еще один метод формирования упорядоченных паттернов, который можно использовать для исследования роли, которую топография играет в стимулировании нейритогенеза. Параметры маски определяют периодичность рисунка, но ширина и глубина гребня определяются условиями травления. В исследовании были созданы гребни с периодами от 400 до 4000 нм, шириной от 70 до 1900 нм и глубиной канавки 600 нм; развивающиеся нейриты продемонстрировали контактное наведение с характеристиками размером всего 70 нм, и более 90% нейритов находились в пределах 10 градусов параллельного выравнивания с гребнями и бороздками.^[27] Не было существенной разницы в ориентации относительно используемых размеров элементов. Число нейритов на клетку ограничивалось гребнями и бороздками, производя скорее биполярный, чем ветвящийся фенотип.^[27]

Неупорядоченные топографии обычно создаются процессами, которые происходят спонтанно во время другой обработки; шаблоны имеют случайную ориентацию и организацию с неточным контролем или отсутствием контроля над геометрией элемента.^[7] Преимущество создания неупорядоченных топографий по сравнению с упорядоченными заключается в том, что процессы зачастую менее трудоемки, менее дороги и не требуют больших навыков и опыта. Неупорядоченные топографии могут быть созданы путем расслоения полимеров, коллоидной литографии и химического травления.

В расслоение полимеровполимерные смеси испытывают спонтанное фазовое разделение; это часто происходит в таких условиях, как центробежное литье на кремниевые пластины. С помощью этого метода можно создать такие элементы, как ямки, островки и ленты нанометрового размера, которыми можно в определенной степени управлять, регулируя соотношение полимеров и концентрация для изменения формы и размера объекта соответственно.^[7] В горизонтальном направлении нет особого контроля, хотя вертикальное направление элементов можно точно контролировать. Поскольку узор очень неупорядочен по горизонтали, этот метод можно использовать только для изучения взаимодействия ячеек с определенной высотой. нанотопографии.^[7]

Коллоидная литография стоит недорого и может использоваться для создания поверхностей с контролируемой высотой и диаметром. Наноколонки используются в качестве маски для травления, распределяя их по поверхности материала, а затем используется бомбардировка ионным пучком или испарение пленки для травления вокруг наноколонок, создавая наностолбцы и наноямки соответственно. Конечную структуру поверхности можно контролировать, варьируя площадь, покрытую коллоидами, и размер коллоида. Площадь, покрываемую коллоидами, можно изменить, изменив ионную силу коллоидного раствора. Этот метод позволяет создавать большие участки поверхности с рисунком, что необходимо для тканевой инженерии.^[7]

Химическое травление включает замачивание поверхности материала в травителе, таком как фтористоводородная кислота (HF) или гидроксид натрия (NaOH), до тех пор, пока поверхность не вытравливается до желаемой шероховатости, создаваемой ямками и выступами в нанометровом масштабе.^[7] Более длительное время травления приводит к получению более шероховатой поверхности (т. Е. Меньшего размера ямок и выступов на поверхности). Структуры с определенной геометрией или организацией не могут быть созданы этим элементарным методом, потому что в лучшем случае его можно рассматривать как обработку поверхности для изменения шероховатости поверхности. Существенными преимуществами этого метода являются простота использования и невысокая стоимость создания поверхности с нанотопографии. Кремний пластины травились с использованием HF, и было показано, что адгезия клеток усиливается только в определенном диапазоне шероховатостей (20–50 нм).^[7]

Химические подсказки

Помимо создания рельефа с помощью физических сигналов, его можно создать с помощью химических сигналов путем выборочного нанесения раствора полимера в виде узоров на поверхность подложки. Существуют разные методы нанесения химических сигналов. Два метода дозирования химических растворов включают нанесение полосок и пьезоэлектрическое микродозирование.

Полимерные пленки с полосатым рисунком может быть сформирован на твердой основе путем заливки разбавленным раствором полимера. Этот метод относительно простой, недорогой и не имеет ограничений по материалам каркасов, которые можно использовать. Процедура включает горизонтальное перекрытие стеклянных пластин, при этом их вертикально разделяет узкая щель, заполненная раствором полимера. Верхняя пластина перемещается с постоянной скоростью от 60 до 100 мкм / с.^[28] A thin liquid film of solution is continuously formed at the edge of the sliding glass following evaporation of the solvent. Stripe patterns prepared at speeds of 60, 70, and 100 µm/s created width and groove spacings of 2.2 and 6.1 µm, 3.6 and 8.4 µm, and 4.3 and 12.7 µm, respectively; the range of heights for the ridges was 50–100 nm.^[28] Tsuruma, Tanaka et al. demonstrated that embryonic neural cells cultured on film coated with poly-L-lysine attached and elongated parallel to poly(ε-caprolactone)/chloroform solution (1g/L) stripes with narrow pattern width and spacing (width: 2.2 µm, spacing: 6.1 µm).^[28] However, the neurons grew across the axis of the patterns with wide width and spacing (width: 4.3 µm, spacing: 12.7 µm). On average, the neurons on the stripe-patterned films had less neurites per cell and longer neurites compared to the neurons on non-patterned films. Thus, the stripe pattern parameters are able to determine the growth direction, the length of neurites, and the number of neurites per cell.^[28]

Микродозирование was used to create micropatterns on polystyrene culture dishes by dispensing droplets of adhesive laminin and non-adhesive бычий сывороточный альбумин (BSA) solutions.^[29] The microdispenser is a пьезоэлектрический element attached to a push-bar on top of a channel etched in silicon, which has one inlet at each end and a nozzle in the middle. The piezoelectric element expands when voltage is applied, causing liquid to be dispensed through the nozzle. The microdispenser is moved using a computer-controlled x-y table. The micropattern resolution depends on many factors: dispensed liquid viscosity, drop pitch (the distance between the centre of two adjacent droplets in a line or array), and the substrate.^[29] With increasing viscosity the lines become thinner, but if the liquid viscosity is too high the liquid cannot be expelled. Heating the solution creates more uniform protein lines. Although some droplet overlap is necessary to create continuous lines, uneven evaporation may cause uneven protein concentration along the lines; this can be prevented through smoother evaporation by modifying the dispensed solution properties.

For patterns containing 0.5 mg/ml laminin, a higher proportion of neurites grew on the microdispensed lines than between the lines.^[29] On 10 mg/ml and 1 mg/ml BSA protein patterns and fatty-acid free BSA protein patterns a significant number of neurites avoided the protein lines and grew between the lines. Thus, the fatty-acid-containing BSA lines were just as non-permissive for neurite growth as lines containing BSA with fatty acids. Because microdispensing does not require direct contact with the substrate surfaces, this technique can utilitze surfaces with delicate micro- or nanotopology that could be destroyed by contact. It is possible to vary the amount of protein deposited by dispensing more or less droplets. An advantage of microdispensing is that patterns can be created quickly in 5–10 minutes. Because the piezoelectric microdispenser does not require heating, heat-sensitive proteins and fluids as well as living cells can be dispensed.^[29]

Scaffold material

The selection of the scaffold material is perhaps the most important decision to be made. It must be biocompatible and biodegradable; in addition, it must be able to incorporate any physical, chemical, or biological cues desired, which in the case of some chemical cues means that it must have a site available for chemically linking peptides and other molecules. The scaffold materials chosen for nerve guidance conduits are almost always hydrogels. The hydrogel may be composed of either biological or synthetic polymers. Both biological and synthetic polymers have their strengths and weaknesses. It is important to note that the conduit material can cause inadequate recovery when (1) degradation and resorption rates do not match the tissue formation rate, (2) the stress-strain properties do not compare well to those of neural tissue, (3) when degrading swelling occurs, causing significant deformation, (4) a large inflammatory response is elicited, or (5) the material has low permeability.^[30]

Гидрогель

Hydrogels are a class of biomaterials that are chemically or physically cross-linked water-soluble polymers. They can be either degradable or non-degradable as determined by their chemistry, but degradable is more desirable whenever possible. There has been great interest in hydrogels for tissue engineering purposes, because they generally possess high biocompatibility, mechanical properties similar to soft tissue, and the ability to be injected as a liquid that gels.^[4] When hydrogels are physically cross-linked they must rely on phase separation for gelation; the phase separation is temperature-dependent and reversible.^[4] Some other advantages of hydrogels are that they use only non-toxic aqueous solvents, allow infusion of nutrients and exit of waste products, and allow cells to assemble spontaneously.^[31] Hydrogels have low interfacial tension, meaning cells can easily migrate across the tissue-implant boundary.^[9] However, with hydrogels it is difficult to form a broad range of mechanical properties or structures with controlled pore size.^[4]

Синтетический полимер

А синтетический полимер may be non-degradable or degradable. For the purpose of neural tissue engineering degradable materials are preferred whenever possible, because long-term effects such as inflammation and scar could severely damage nerve function. The degradation rate is dependent on the molecular weight of the polymer, its crystallinity, and the ratio of glycolic acid to lactic acid subunits.^[4] Из-за метильная группа, lactic acid is more hydrophobic than гликолевая кислота causing its hydrolysis to be slower.^[4] Synthetic polymers have more wieldy mechanical properties and degradation rates that can be controlled over a wide range, and they eliminate the concern for immunogenicity.^[4] There are many different synthetic polymers currently being used in neural tissue engineering. However, the drawbacks of many of these polymers include a lack of biocompatibility and bioactivity, which prevents these polymers from promoting cell attachment, proliferation, and differentiation.^[32] Synthetic conduits have only been clinically successful for the repair of very short nerve lesion gaps less than 1–2 cm.^[33] Furthermore, nerve regeneration with these conduits has yet to reach the level of functional recovery seen with nerve autografts.^[30]

Collagen-terpolymer

Коллаген является основным компонентом внеклеточный матрикс, and it is found in the supporting tissues of peripheral nerves. A terpolymer (TERP) was synthesized by free radical copolymerization of its three monomers and cross-linked with collagen, creating a hybrid biological-synthetic hydrogel scaffold.^[15] The terpolymer is based on poly(NIPAAM), which is known to be a cell friendly polymer. TERP is used both as a cross-linker to increase hydrogel robustness and as a site for grafting of bioactive peptides or growth factors, by reacting some of its acryloxysuccinimide groups with the –NH2 groups on the peptides or growth factors.^[15] Because the collagen-terpolymer (collagen-TERP) hydrogel lacks a bioactive component, a study attached to it a common cell adhesion peptide found in ламинин (YIGSR) in order to enhance its cell adhesion properties.^[15]

Poly (lactic-co-glycolic acid) family

The polymers in the PLGA family include poly (lactic acid) (PLA), poly (glycolic acid) (PGA), and their copolymer poly (lactic-co-glycolic acid) (PLGA). All three polymers have been approved by the Food and Drug Administration for employment in various devices. These polymers are brittle and they do not have regions for permissible chemical modification; in addition, they degrade by bulk rather than by surface, which is not a smooth and ideal degradation process.^[4] In an attempt to overcome the lack of functionalities, free amines have been incorporated into their structures from which peptides can be tethered to control cell attachment and behavior.^[4]

Methacrylated dextran (Dex-MA) copolymerized with aminoethyl methacrylate (AEMA)

Декстран is a polysaccharide derived from bacteria; it is usually produced by enzymes from certain strains of leuconostoc или же Стрептококк. It consists of α-1,6-linked D-glucopyranose residues. Cross-linked dextran hydrogel beads have been widely used as low protein-binding matrices for колоночная хроматография applications and for microcarrier cell culture technology.^[34] However, it has not been until recently that dextran hydrogels have been investigated in biomaterials applications and specifically as drug delivery vehicles. An advantage of using dextran in biomaterials applications include its resistance to protein adsorption and cell-adhesion, which allows specific cell adhesion to be determined by deliberately attached peptides from ECM components.^[34] AEMA was copolymerized with Dex-MA in order to introduce primary amine groups to provide a site for attachment of ECM-derived peptides to promote cell adhesion. The peptides can be immobilized using sulfo-SMMC coupling chemistry and cysteine-terminated peptides. Copolymerization of Dex-MA with AEMA allowed the macroporous geometry of the scaffolds to be preserved in addition to promoting cellular interactions.^[34]

Poly(glycerol sebacate) (PGS)

A novel biodegradable, tough elastomer has been developed from poly(glycerol sebacate) (PGS) for use in creation of a nerve guidance conduit.^[30] PGS was originally developed for soft tissue engineering purposes to specifically mimic ECM mechanical properties. It is considered an elastomer because it is able to recover from deformation in mechanically dynamic environments and to effectively distribute stress evenly throughout regenerating tissues in the form of microstresses. PGS is synthesized by a polycondensation reaction of glycerol and sebacic acid, which can be melt processed or solvent processed into the desired shape. PGS has a Модуль для младших of 0.28 MPa and an ultimate tensile strength greater than 0.5 MPa.^[30] Peripheral nerve has a Young's modulus of approximately 0.45 MPa, which is very close to that of PGS. Additionally, PGS experiences surface degradation, accompanied by losses in linear mass and strength during resorption.^[30] Following implantation, the degradation half-life was determined to be 21 days; complete degradation occurred at day 60.^[30] PGS experiences minimal water absorption during degradation and does not have detectable swelling; swelling can cause distortion, which narrows the tubular lumen and can impede regeneration. It is advantageous that the degradation time of PGS can be varied by changing the degree of crosslinking and the ratio of sebacic acid to glycerol.^[30] In a study by Sundback et al. (2005), implanted PGS and PLGA conduits had similar early tissue responses; however, PLGA inflammatory responses spiked later, while PGS inflammatory responses continued to decreases.^[30]

Polyethylene glycol hydrogel

Полиэтиленгликоль (PEG) hydrogels are biocompatible and proven to be tolerated in many tissue types, including the CNS. Mahoney and Anseth formed PEG hydrogels by photopolymerizing methacrylate groups covalently linked to degradable PEG macromers. Hydrogel degradation was monitored over time by measuring mechanical strength (compressive modulus) and average mesh size from swelling ratio data.^[35] Initially, the polymer chains were highly cross-linked, but as degradation proceeded, ester bonds were hydrolyzed, allowing the gel to swell; the compressive modulus decreased as the mesh size increased until the hydrogel was completely dissolved. It was demonstrated that neural precursor cells were able to be photoencapsulated and cultured on the PEG gels with minimal cell death. Because the mesh size is initially small, the hydrogel blocks inflammatory and other inhibitory signals from surrounding tissue. As the mesh size increases, the hydrogel is able to serve as a scaffold for axon regeneration.^[35]

Biological polymers

There are advantages to using biological polymers over synthetic polymers. They are very likely to have good biocompatibility and be easily degraded, because they are already present in nature in some form. However, there are also several disadvantages. They have unwieldy mechanical properties and degradation rates that cannot be controlled over a wide range. In addition, there is always the possibility that naturally-derived materials may cause an immune response or contain microbes.^[4] In the production of naturally-derived materials there will also be batch-to-batch variation in large-scale isolation procedures that cannot be controlled.^[16] Some other problems plaguing natural polymers are their inability to support growth across long lesion gaps due to the possibility of collapse, scar formation, and early re-absorption.^[16] Despite all these disadvantages, some of which can be overcome, biological polymers still prove to be the optimal choice in many situations.

Polysialic acid (PSA)

Polysialic acid (PSA) is a relatively new biocompatible and bioresorbable material for artificial nerve conduits. It is a homopolymer of α2,8-linked sialic acid residues and a dynamically regulated posttranslational modification of the neural cell adhesion molecule (NCAM). Recent studies have demonstrated that polysialylated NCAM (polySia-NCAM) promotes regeneration in the motor system.^[36] PSA shows stability under cell culture conditions and allows for induced degradation by enzymes. It has also been discovered recently that PSA is involved in steering processes like neuritogenesis, axonal path finding, and neuroblast migration.^[36] Animals with PSA genetically knocked out express a lethal phenotype, which has unsuccessful path finding; nerves connecting the two brain hemispheres were aberrant or missing.^[36] Thus PSA is vital for proper nervous system development.

Collagen Type I/III

Коллаген is the major component of the extracellular matrix and has been widely used in nerve regeneration and repair. Due to its smooth microgeometry and permeability, collagen gels are able to allow diffusion of molecules through them. Collagen resorption rates are able to be controlled by crosslinking collagen with polypoxy compounds.^[6] Additionally, collagen type I/III scaffolds have demonstrated good biocompatibility and are able to promote Schwann cell proliferation. However, collagen conduits filled with Schwann cells used to bridge nerve gaps in rats have shown surprisingly unsuccessful nerve regeneration compared to nerve autografts.^[6] This is because biocompatibility is not the only factor necessary for successful nerve regeneration; other parameters such as inner diameter, inner microtopography, porosity, wall thickness, and Schwann cell seeding density will need to be examined in future studies in order to improve the results obtained by these collagen I/III gels.^[6]

Spider silk fiber

Паучий шелк fibers are shown to promote cellular adhesion, proliferation, and vitality. Allmeling, Jokuszies et al. showed that Schwann cells attach quickly and firmly to the silk fibers, growing in a bipolar shape; proliferation and survival rates were normal on the silk fibers.^[37]

They used spider silk fibers to create a nerve conduit with Schwann cells and acellularized xenogenic veins. The Schwann cells formed columns along the silk fibers in a short amount of time, and the columns were similar to bands of Bungner that grow in vivo after PNS injury.^[37] Spider silk has not been used in tissue engineering until now because of the predatory nature of spiders and the low yield of silk from individual spiders. It has been discovered that the species Nephila clavipes produces silk that is less immunogenic than silkworm silk; it has a tensile strength of 4 x 109 N/m, which is six times the breaking strength of steel.^[37] Because spider silk is proteolytically degraded, there is not a shift in pH from the physiological pH during degradation. Other advantages of spider silk include its resistance to fungal and bacterial decomposition for weeks and the fact that it does not swell. Also, the silk's structure promotes cell adhesion and migration. However, silk harvest is still a tedious task and the exact composition varies among species and even among individuals of the same species depending on diet and environment. There have been attempts to synthetically manufacture spider silk. Further studies are needed to test the feasibility of using a spider silk nerve conduit in vitro и in vivo.^[37]

Silkworm silk fibroin

In addition to spiders, silkworms are another source of silk. Protein from Bombyx mori silkworms is a core of fibroin protein surrounded by sericin, which is a family of glue-like proteins. Fibroin has been characterized as a heavy chain with a repeated hydrophobic and crystallizable sequence: Gly-Ala-Gly-Ala-Gly-X (X stands for Ser or Tyr). The surrounding sericin is more hydrophilic due to many polar residues, but it does still have some hydrophobic β-sheet portions. Silks have been long been used as sutures due to their high mechanical strength and flexibility as well as permeability to water and oxygen. In addition, silk fibroin can be easily manipulated and sterilized. However, silk use halted when undesirable immunological reactions were reported. Recently, it has been discovered that the cause of the immunological problems lies solely with the surrounding sericin.^[38] Since this discovery, silk with the sericin removed has been used in many pharmaceutical and biomedical applications. Because it is necessary to remove the sericin from around the fibroin before the silk can be used, an efficient procedure needs to be developed for its removal, which is known as degumming. One degrumming method uses boiling aqueous Na₂CO₃ solution, which removes the sericin without damaging the fibroin. Yang, Chen et al. demonstrated that the silk fibroin and silk fibroin extract fluid show good biocompatibility with Schwann cells, with no cytotoxic effects on proliferation.^[38]

Хитозан

Хитозан и хитин belong to a family of biopolymers composed of β(1–4)-linked N-acetyl-D-glucosamine and D-glucosamine subunits.^[39] Chitosan is formed by alkaline N-deacetylation of chitin, which is the second most abundant natural polymer after cellulose.^[14] Chitosan is a biodegradable polysaccharide that has been useful in many biomedical applications such as a chelating agent, drug carrier, membrane, and water treatment additive.^[11] Chitosan is soluble in dilute aqueous solutions, but precipitates into a gel at a neutral pH.^[11] It does not support neural cell attachment and proliferation well, but can be enhanced by ECM-derived peptide attachment. Chitosan also contains weak mechanical properties, which are more challenging to overcome.^[9]

Degree of acetylation (DA) for soluble chitosan ranges from 0% to 60%, depending on processing conditions.^[39] A study was conducted to characterize how varying DA affects the properties of chitosan. Varying DA was obtained using уксусный ангидрид или же щелочной гидролиз. It was found that decreasing acetylation created an increase in compressive strength.^[39] Biodegradation was examined by use of lysozyme, which is known to be mainly responsible for degrading chitosan in vivo by hydrolyzing its glycosidic bonds and is released by phagocytic cells after nerve injury. The results reveal that there was an accelerated mass loss with intermediate DAs, compared with high and low DAs over the time period studied.^[39] When DRG cells were grown on the N-acetylated chitosan, cell viability decreased with increasing DA. Also, chitosan has an increasing charge density with decreasing DA, which is responsible for greater cell adhesion.^[39] Thus, controlling the DA of chitosan is important for regulating the degradation time. This knowledge could help in the development of a nerve guidance conduit from chitosan.

Арагонит

Арагонит scaffolds have recently been shown to support the growth of neurons from rat hippocampi. Shany et al. (2006) proved that aragonite matrices can support the growth of astrocytic networks in vitro и in vivo. Thus, aragonite scaffolds may be useful for nerve tissue repair and regeneration. It is hypothesized that aragonite-derived Ca²⁺ is essential for promoting cell adherence and cell–cell contact. This is probably carried out through the help of Ca²⁺-dependent adhesion molecules such as cadherins.^[40] Aragonite crystalline matrices have many advantages over hydrogels. They have larger pores, which allows for better cell growth, and the material is bioactive as a result of releasing Ca²⁺, which promotes cell adhesion and survival. In addition, the aragonite matrices have higher mechanical strength than hydrogels, allowing them to withstand more pressure when pressed into an injured tissue.^[40]

Альгинат

Alginate is a polysaccharide that readily forms chains; it can be cross-linked at its carboxylic groups with multivalent cations such as Cu²⁺, Ca²⁺, or Al³⁺ to form a more mechanically stable hydrogel.^[41] Calcium alginates form polymers that are both biocompatible and non-immunogenic and have been used in tissue engineering applications. However, they are unable to support longitudinally oriented growth, which is necessary for reconnection of the proximal end with its target. In order to overcome this problem, anisotropic capillary hydrogels (ACH) have been developed. They are created by superimposing aqueous solutions of sodium alginate with aqueous solutions of multivalent cations in layers.^[41] After formation, the electrolyte ions diffuse into the polymer solution layers, and a dissipative convective process causes the ions to precipitate, creating capillaries. The dissipative convective process results the opposition of diffusion gradients and friction between the polyelectrolyte chains.^[41] The capillary walls are lined with the precipitated metal alginate, while the lumen is filled with the extruded water.

Prang et al. (2006) assessed the capacity of ACH gels to promote directed axonal regrowth in the injured mammalian CNS. The multivalent ions used to create the alginate-based ACH gels were copper ions, whose diffusion into the sodium alginate layers created hexagonally structured anisotropic capillary gels.^[41] After precipitation, the entire gel was traversed by longitudinally oriented capillaries. The ACH scaffolds promoted adult NPC survival and highly oriented axon regeneration.^[41] This is the first instance of using alginates to produce anisotropic structured capillary gels. Future studies are need to study the long-term physical stability of the ACH scaffolds, because CNS axon regeneration can take many months; however, in addition to being able to provide long-term support the scaffolds must also be degradable. Of all the biological and synthetic biopolymers investigated by Prang et al. (2006), only agarose-based gels were able to compare with the linear regeneration caused by ACH scaffolds. Future studies will also need to investigate whether the ACH scaffolds allow for reinnervation of the target in vivo after a spinal cord injury.^[41]

Hyaluronic acid hydrogel

Гиалуроновая кислота (HA) is a widely used biomaterial as a result of its excellent biocompatibility and its physiologic function diversity. It is abundant in the extracellular matrix (ECM) where it binds large glycosaminoglycans (GAGs) and proteoglycans through specific HA-protein interactions. HA also binds cell surface receptors such as CD44, which results in the activation of intracellular signaling cascades that regulate cell adhesion and motility and promote proliferation and differentiation.^[42] HA is also known to support angiogenesis because its degradation products stimulate endothelial cell proliferation and migration. Thus, HA plays a pivotal role in maintaining the normal processes necessary for tissue survival. Unmodified HA has been used in clinical applications such as ocular surgery, wound healing, and plastic surgery.^[42] HA can be crosslinked to form hydrogels. HA hydrogels that were either unmodified or modified with laminin were implanted into an adult central nervous system lesion and tested for their ability to induce neural tissue formation in a study by Hou et al.. They demonstrated the ability to support cell ingrowth and angiogenesis, in addition to inhibiting glial scar formation. Also, the HA hydrogels modified with laminin were able to promote neurite extension.^[42] These results support HA gels as a promising biomaterial for a nerve guidance conduit.

Cellular therapies

In addition to scaffold material and physical cues, biological cues can also be incorporated into a bioartificial nerve conduit in the form of cells. In the nervous system there are many different cell types that help support the growth and maintenance of neurons. These cells are collectively termed glial cells. Glial cells have been investigated in an attempt to understand the mechanisms behind their abilities to promote axon regeneration. Three types of glial cells are discussed: Schwann cells, astrocytes, and olfactory ensheathing cells. In addition to glial cells, stem cells also have potential benefit for repair and regeneration because many are able to differentiate into neurons or glial cells. This article briefly discusses the use of adult, transdifferentiated mesenchymal, ectomesenchymal, neural and neural progenitor stem cells.

Глиальные клетки

Глиальные клетки are necessary for supporting the growth and maintenance of neurons in the peripheral and central nervous system. Most glial cells are specific to either the peripheral or central nervous system. Schwann cells are located in the peripheral nervous system where they myelinate the axons of neurons. Astrocytes are specific to the central nervous system; they provide nutrients, physical support, and insulation for neurons. They also form the blood brain barrier. Olfactory ensheathing cells, however, cross the CNS-PNS boundary, because they guide olfactory receptor neurons from the PNS to the CNS.

Шванновские клетки

Шванновские клетки (SC) are crucial to peripheral nerve regeneration; they play both structural and functional roles. Schwann cells are responsible for taking part in both Wallerian degeneration and bands of Bungner. When a peripheral nerve is damaged, Schwann cells alter their morphology, behavior and proliferation to become involved in Валлеровское вырождение and Bungner bands.^[38] In Wallerian degeneration, Schwann cells grow in ordered columns along the endoneurial tube, creating a band of Bungner (boB) that protects and preserves the endoneurial channel. Additionally, they release neurotrophic factors that enhance regrowth in conjunction with macrophages. There are some disadvantages to using Schwann cells in neural tissue engineering; for example, it is difficult to selectively isolate Schwann cells and they show poor proliferation once isolated. One way to overcome this difficulty is to artificially induce other cells such as stem cells into SC-like phenotypes.^[43]

Eguchi et al. (2003) have investigated the use of magnetic fields in order to align Schwann cells. They used a horizontal type superconducting magnet, which produces an 8 T field at its center. Within 60 hours of exposure, Schwann cells aligned parallel to the field; during the same interval, Schwann cells not exposed oriented in a random fashion. It is hypothesized that differences in magnetic field susceptibility of membrane components and cytoskeletal elements may cause the magnetic orientation.^[44] Collagen fibers were also exposed to the magnetic field, and within 2 hours, they aligned perpendicular to the magnetic field, while collagen fibers formed a random meshwork pattern without magnetic field exposure. When cultured on the collagen fibers, Schwann cells aligned along the magnetically oriented collagen after two hours of 8-T magnetic field exposure. In contrast, the Schwann cells randomly oriented on the collagen fibers without magnetic field exposure. Thus, culture on collagen fibers allowed Schwann cells to be oriented perpendicular to the magnetic field and oriented much quicker.^[44]

These findings may be useful for aligning Schwann cells in a nervous system injury to promote the formation of bands of Bungner, which are crucial for maintaining the endoneurial tube that guides the regrowing axons back to their targets. It is nearly impossible to align Schwann cells by external physical techniques; thus, the discovery of an alternative technique for alignment is significant. However, the technique developed still has its disadvantages, namely that it takes a considerable amount of energy to sustain the magnetic field for extended periods.

Studies have been conducted in attempts to enhance the migratory ability of Schwann cells. Schwann cell migration is regulated by integrins with ECM molecules such as fibronectin and laminin. In addition, neural cell adhesion molecule (NCAM ) is known to enhance Schwann cell motility in vitro.^[45] NCAM is a glycoprotein that is expressed on axonal and Schwann cell membranes. Polysialic acid (PSA) is synthesized on NCAM by polysialyltransferase (PST) and sialyltransferase X (STX).^[45] During the development of the CNS, PSA expression on NCAM is upregulated until postnatal stages. However, in the adult brain PSA is found only in regions with high plasticity. PSA expression does not occur on Schwann cells.

Lavdas et al. (2006) investigated whether sustained expression of PSA on Schwann cells enhances their migration. Schwann cells were tranduced with a retroviral vector encoding STX in order to induce PSA expression. PSA-expressing Schwann cells did obtain enhanced motility as demonstrated in a gap bridging assay and after grafting in postnatal forebrain slice cultures.^[45] PSA expression did not alter molecular and morphological differentiation. The PSA-expressing Schwann cells were able to myelinate CNS axons in cerebellar slices, which is not normally possible in vivo. It is hopeful that these PSA-expressing Schwann cells will be able to migrate throughout the CNS without loss of myelinating abilities and may become useful for regeneration and myelination of axons in the central nervous system.^[45]

Астроциты

Астроциты are glial cells that are abundant in the central nervous system. They are crucial for the metabolic and trophic support of neurons; additionally, astrocytes provide ion buffering and neurotransmitter clearance. Growing axons are guided by cues created by astrocytes; thus, astrocytes can regulate neurite pathfinding and subsequently, patterning in the developing brain.^[40] The glial scar that forms post-injury in the central nervous system is formed by astrocytes and фибробласты; it is the most significant obstacle for regeneration. The glial scar consists of hypertrophied astrocytes, connective tissue, and ECM. Two goals of neural tissue engineering are to understand astrocyte function and to develop control over astrocytic growth. Studies by Shany et al. (2006) have demonstrated that astrocyte survival rates are increased on 3D aragonite matrices compared to conventional 2D cell cultures. The ability of cell processes to stretch out across curves and pores allows for the formation of multiple cell layers with complex 3D configurations.

The three distinct ways by which the cells acquired a 3D shape are:^[40]

1. adhering to surface and following the 3D contour
2. stretching some processes between 2 curvatures
3. extending processes in 3D within cell layers when located within multilayer tissue

In conventional cell culture, growth is restricted to one plane, causing monolayer formation with most cells contacting the surface; however, the 3D curvature of the aragonite surface allows multiple layers to develop and for astrocytes far apart to contact each other. It is important to promote process formation similar to 3D in vivo conditions, because astrocytic process morphology is essential in guiding directionality of regenerating axons.^[40] The aragonite topography provides a high surface area to volume ratio and lacks edges, which leads to a reduction of the culture edge effect.^[40] Crystalline matrices such as the aragonite mentioned here are allowed for the promotion of a complex 3D tissue formation that approaches in vivo условия.

Обонятельные обволакивающие клетки

The mammalian primary обонятельная система has retained the ability to continuously regenerate during adulthood.^[46] Обонятельные рецепторные нейроны have an average lifespan of 6–8 weeks and therefore must be replaced by cells differentiated from the stem cells that are within a layer at the nearby epithelium's base. The new olfactory receptor neurons must project their axons through the CNS to an обонятельная луковица in order to be functional. Axonal growth is guided by the glial composition and cytoarchitecture of the olfactory bulb in addition to the presence of olfactory ensheathing cells (ОИК).^[46]

It is postulated that OECs originate in the olfactory placode, suggesting a different developmental origin than other similar nervous system microglia.

Another interesting concept is that OECs are found in both the peripheral and central nervous system portions of the primary olfactory system, that is, the olfactory epithelium and bulb.^[46]

OECs are similar to Schwann cells in that they provide an upregulation of low-affinity NGF receptor p75 following injury; however, unlike Schwann cells they produce lower levels of нейротрофины. Several studies have shown evidence of OECs being able to support regeneration of lesioned axons, but these results are often unable to be reproduced.^[46]Regardless, OECs have been investigated thoroughly in relation to spinal cord injuries, боковой амиотрофический склероз, and other neurodegenerative diseases. Исследователи предполагают, что эти клетки обладают уникальной способностью ремиелинизировать поврежденные нейроны.^[47]

OECs have properties similar to those of астроциты,^[48] both of which have been identified as being susceptible to viral infection.^[47][48]

Стволовые клетки

Стволовые клетки are characterized by their ability to self-renew for a prolonged time and still maintain the ability to differentiate along one or more cell lineages. Stem cells may be unipotent, multipotent, or pluripotent, meaning they can differentiate into one, multiple, or all cell types, respectively.^[49] Pluripotent stem cells can become cells derived from any of the three embryonic germ layers.^[49] Stem cells have the advantage over glial cells because they are able to proliferate more easily in culture. However, it remains difficult to preferentially differentiate these cells into varied cell types in an ordered manner.^[4] Another difficulty with stem cells is the lack of a well-defined definition of stem cells beyond hematopoietic stem cells (HSCs). Each stem cell 'type' has more than one method for identifying, isolating, and expanding the cells; this has caused much confusion because all stem cells of a 'type' (neural, mesenchymal, retinal) do not necessarily behave in the same manner under identical conditions.

Взрослые стволовые клетки

Adult stem cells are not able to proliferate and differentiate as effectively in vitro as they are able to in vivo. Adult stem cells can come from many different tissue locations, but it is difficult to isolate them because they are defined by behavior and not surface markers. A method has yet to be developed for clearly distinguishing between stem cells and the differentiated cells surrounding them. However, surface markers can still be used to a certain extent to remove most of the unwanted differentiated cells. Stem cell plasticity is the ability to differentiate across embryonic germ line boundaries. Though, the presence of plasticity has been hotly contested. Some claim that plasticity is caused by heterogeneity among the cells or cell fusion events. Currently, cells can be differentiated across cell lines with yields ranging from 10% to 90% depending on techniques used.^[49] More studies need to be done in order to standardize the yield with transdifferentiation. Transdifferentiation of multipotent stem cells is a potential means for obtaining stem cells that are not available or not easily obtained in the adult.^[4]

Мезенхимальные стволовые клетки

Мезенхимальные стволовые клетки are adult stem cells that are located in the bone marrow; they are able to differentiate into lineages of mesodermal origin. Some examples of tissue they form are кость, хрящ, толстый, и сухожилие. MSCs are obtained by aspiration of bone marrow. Many factors promote the growth of MSCs including: фактор роста тромбоцитов, фактор роста эпидермиса β, and insulin-like growth factor-1. In addition to their normal differentiation paths, MSCs can be transdifferentiated along nonmesenchymal lineages such as astrocytes, neurons, and PNS myelinating cells. MSCs are potentially useful for nerve regeneration strategies because:^[50]

1. their use is not an ethical concern
2. no immunosuppression is needed
3. they are an abundant and accessible resource
4. they tolerate genetic manipulations

Keilhoff et al. (2006) performed a study comparing the nerve regeneration capacity of non-differentiated and transdifferentiated MSCs to Шванновские клетки in devitalized muscle grafts bridging a 2-cm gap in the rat sciatic nerve. All cells were autologous. The transdifferentiated MSCs were cultured in a mixture of factors in order to promote Schwann cell-like cell formation. The undifferentiated MSCs demonstrated no regenerative capacity, while the transdifferentiated MSCs showed some regenerative capacity, though it did not reach the capacity of the Schwann cells.^[50]

Ectomesenchymal stem cells (EMSCs)

The difficulty of isolating Schwann cells and subsequently inducing proliferation is a large obstacle. A solution is to selectively induce cells such as ectomesenchymal stem cells (EMSCs) into Schwann cell-like phenotypes. EMSCs are neural crest cells that migrate from the cranical neural crest into the first branchial arch during early development of the peripheral nervous system.^[43] EMSCs are мультипотентный and possess a self-renewing capacity. They can be thought of as Schwann progenitor cells because they are associated with ганглий дорзального корня and motor nerve development. EMSC дифференциация appears to be regulated by intrinsic genetic programs and extracellular signals in the surrounding environment.^[43] Schwann cells are the source for both neurotropic and нейротрофические факторы essential for regenerating nerves and a scaffold for guiding growth. Nie, Zhang et al. conducted a study investigating the benefits of culturing EMSCs within PLGA conduits. Adding foskolin and BPE to an EMSC culture caused the formation of elongated cell processes, which is common to Schwann cells in vitro.^[43] Thus, foskolin and BPF may induce differentiation into Schwann cell-like phenotypes. BPE contains the cytokines GDNF, базовый фактор роста фибробластов и фактор роста тромбоцитов, which cause differentiation and proliferation of glial and Schwann cells by activating MAP kinases. When implanted into the PLGA conduits, the EMSCs maintained long-term survival and promoted peripheral nerve regeneration across a 10 mm gap, which usually demonstrates little to no regeneration. Миелинизированный axons were present within the grafts and basal laminae were formed within the myelin. These observations suggest that EMSCs may promote myelination of regenerated nerve fibers within the conduit.

Neural progenitor cells

Inserting neurons into a bioartificial nerve conduit seems like the most obvious method for replacing damaged nerves; however, neurons are unable to proliferate and they are often short-lived in culture. Thus, neural progenitor cells are more promising candidates for replacing damaged and degenerated neurons because they are self-renewing, which allows for the in vitro production of many cells with minimal donor material.^[31] In order to confirm that the new neurons formed from neural progenitor cells are a part of a functional network, the presence of synapse formation is required. A study by Ma, Fitzgerald et al. is the first demonstration of murine neural stem and progenitor cell-derived functional synapse and neuronal network formation on a 3D collagen matrix. The neural progenitor cells expanded and spontaneously differentiated into excitable neurons and formed synapses; furthermore, they retained the ability to differentiate into the three neural tissue lineages.^[31] It was also demonstrated that not only active synaptic vesicle recycling occurred, but also that excitatory and inhibitory connections capable of generating action potentials spontaneously were formed.^[31] Thus, neural progenitor cells are a viable and relatively unlimited source for creating functional neurons.

Нервные стволовые клетки

Нервные стволовые клетки (NSCs) have the capability to self-renew and to differentiate into neuronal and glial lineages. Many culture methods have been developed for directing NSC differentiation; however, the creation of biomaterials for directing NSC differentiation is seen as a more clinically relevant and usable technology.^{[нужна цитата ]} One approach to develop a biomaterial for directing NSC differentiation is to combine extracellular matrix (ECM) components and growth factors. A very recent study by Nakajima, Ishimuro et al. examined the effects of different molecular pairs consisting of a growth factor and an ECM component on the differentiation of NSCs into astrocytes and neuronal cells. The ECM components investigated were laminin-1 and fibronectin, which are natural ECM components, and ProNectin F plus (Pro-F) and ProNectin L (Pro-L), which are artificial ECM components, and poly(ethyleneimine) (PEI). В нейротрофические факторы used were фактор роста эпидермиса (EGF), фактор роста фибробластов -2 (FGF-2), фактор роста нервов (NGF), neurotrophin-3 (NT-3), and ciliary neurotrophic factor (CNTF). The pair combinations were immobilized onto matrix cell arrays, on which the NSCs were cultured. After 2 days in culture, the cells were stained with antibodies against нестин, β-тубулин III и GFAP, which are markers for NSCs, neuronal cells, and astrocytes, respectively.^[51] The results provide valuable information on advantageous combinations of ECM components and growth factors as a practical method for developing a biomaterial for directing differentiation of NSCs.^[51]

Нейротрофические факторы

В настоящее время, нейротрофические факторы are being intensely studied for use in bioartificial nerve conduits because they are necessary in vivo для направления роста и регенерации аксонов. В исследованиях нейротрофические факторы обычно используются в сочетании с другими методами, такими как биологические и физические сигналы, создаваемые добавлением клеток и определенных топографий. Нейротрофические факторы могут быть иммобилизованы или не иммобилизованы на каркасной структуре, хотя иммобилизация предпочтительна, поскольку она позволяет создавать постоянные контролируемые градиенты. В некоторых случаях, например, нервные системы доставки лекарств, они слабо иммобилизованы, так что могут выборочно высвобождаться в определенное время и в определенных количествах. Drug delivery is the next step beyond the basic addition of growth factors to nerve guidance conduits.

Биомиметические материалы

Many biomaterials used for nerve guidance conduits are biomimetic materials. Biomimetic materials are materials that have been design such that they elicit specified cellular responses mediated by interactions with scaffold-tethered peptides from ECM proteins; essentially, the incorporation of cell-binding peptides into biomaterials via chemical or physical modification.^[52]

Синергизм

Синергизм often occurs when two elements are combined; it is an interaction between two elements that causes an effect greater than the combined effects of each element separately. Synergism is evident in the combining of scaffold material and topography with cellular therapies, neurotrophic factors, and biomimetic materials. Investigation of synergism is the next step after individual techniques have proven to be successful by themselves. The combinations of these different factors need to be carefully studied in order to optimize synergistic effects.

Optimizing neurotrophic factor combinations

It was hypothesized that interactions between neurotrophic factors could alter the optimal concentrations of each factor. While cell survival and phenotype maintenance are important, the emphasis of evaluation was on neurite extension. Сочетание NGF, glial cell-line derived neurotrophic factor (GDNF ), and ciliary neurotrophic factor (CNTF ) was presented to Ганглий дорсального корня культуры in vitro. One factor from each neurotrophic family was used.^[53] It was determined that there is not a difference in individual optimal concentration and combinatorial optimal concentration; however, around day 5 or 6 the neurites ceased extension and began to degrade. Было выдвинуто предположение, что это произошло из-за отсутствия необходимого питательного вещества или надлежащих градиентов; предыдущие исследования показали, что факторы роста способны оптимизировать расширение нейритов лучше всего, когда представлены в градиентах.^[53] Будущие исследования комбинаций нейротрофических факторов должны будут включать градиенты.

Комбинация молекул адгезии нервных клеток и GFD-5

Молекулы клеточной адгезии (CAM) и нейротрофические факторы, встроенные вместе в биосовместимые матрицы, - это относительно новая концепция, которая исследуется.^[54] САМ суперсемейство иммуноглобулинов (IgSF), который включает L1 / NgCAM и нейрофасцин, особенно многообещающие, поскольку они экспрессируются в развивающейся нервной системе на нейронах или шванновских клетках. Известно, что они служат ориентирами и опосредуют дифференцировку нейронов. Нейротрофические факторы такие как NGF и фактор дифференциации роста 5 (GDF-5), однако, хорошо известны как промоторы регенерации in vivo. Недавнее исследование Niere, Brown et al. исследовали синергетические эффекты объединения L1 и нейрофасцина с NGF и GDF-5 на нейроны DRG в культуре; эта комбинация усиливала рост нейритов. Дальнейшее усиление было продемонстрировано путем объединения L1 и нейрофасцина в искусственный гибридный белок, который повышает эффективность, поскольку факторы не доставляются индивидуально.^[54] Можно не только использовать разные реплики, но и объединить их в одну «новую» реплику.

Топография в синергии с химическими и биологическими подсказками

Эффект предъявления нескольких типов стимулов, таких как химические, физические и биологические сигналы, на дифференцировку нервных клеток-предшественников не изучался. Было проведено исследование, в котором три различных стимула были предъявлены клеткам-предшественникам гиппокампа взрослых крыс (AHPC): постнатальные астроциты крысы типа 1 (биологические), ламинин (химические) и субстрат с микроструктурами (физический).^[55] Более 75% AHPC выровнены в пределах 20 ° от канавок по сравнению со случайным ростом на подложках без рисунка.^[55] Когда AHPC выращивали на субстратах с микрорельефами с астроцитами, на рост влияли астроциты, которые выровнялись с бороздками; а именно, AHPCs расширяли отростки вдоль филаментов цитоскелета астроцитов. Однако выравнивание не было таким значительным, как у AHPC в культуре только с субстратом с микрорельефом. Чтобы оценить различные фенотипы, выраженные в результате дифференцировки, клетки окрашивали антителами к β-тубулину класса III (TuJI), рецептор-взаимодействующему белку (RIP) и глиальному фибриллярному кислому белку (GFAP), которые являются маркерами для ранние нейроны, олигодендроциты и астроциты соответственно. Наибольшая дифференциация наблюдалась с AHPC, культивированными на структурированных субстратах с астроцитами.^[55]

Рекомендации

внешняя ссылка

• Технологический институт Джорджии: Лаборатория нейроинженерии
• Общество неврологии