Sulfolobus solfataricus - Sulfolobus solfataricus

Sulfolobus solfataricus
Научная классификация
Домен:
Археи
Королевство:
Crenarchaeota
Тип:
Crenarchaeota
Учебный класс:
Термопротеи
Заказ:
Sulfolobales
Семья:
Sulfolobaceae
Род:
Saccharolobus
Разновидность:
S. solfataricus
Биномиальное имя
Saccharolobus solfataricus
(Стеттер и Зиллиг, 1980) Сакаи и Куросава, 2018

Saccharolobus solfataricus это разновидность из теплолюбивый Археон. Он был переведен из рода Sulfolobus в новый род Saccharolobus с описанием Saccharolobus caldissimus в 2018 году.[1]

Впервые он был изолирован и обнаружен в Сольфатара вулкан (в честь которого он был впоследствии назван) в 1980 году двумя немецкими микробиологами Карлом Сеттером и Вольфрамом Циллигом в вулкане Сольфатара (Пишарелли-Кампания, Италия).[2]

Однако эти организмы не изолированы от вулканов, а встречаются по всему миру в таких местах, как горячие источники. Этот вид лучше всего растет при температуре около 80 ° C, уровне pH от 2 до 4 и достаточном количестве серы для Solfataricus метаболизировать, чтобы получить энергию. Эти условия квалифицируют его как экстремофил и это особенно известно как термоацидофил из-за его предпочтения к высоким температурам и низким уровням pH, а также к аэробным и гетеротропным категориям по своей метаболической системе.[3] Он обычно имеет сферическую форму ячеек и образует частые доли. Будучи автотроф он получает энергию от выращивания на сере или даже на различных органических соединениях.[4]

В настоящее время это наиболее изученный организм, который находится в Crenarchaeota ответвляться. Сольфатарикус исследуются их методы репликации ДНК, клеточного цикла, хромосомной интеграции, транскрипции, обработки РНК и трансляции. Все данные указывают на то, что организм имеет большой процент генов, специфичных для архей, что демонстрирует различия между тремя типами микробов: археи, бактерии, и эукария.

Геном

Sulfolobus solfataricus самый изученный микроорганизм с молекулярной, генетической и биохимической точек зрения на способность к процветанию в экстремальных условиях; легко культивируется в лаборатории; более того, он может обмениваться генетическим материалом посредством процессов трансформации, трансдукции и конъюгации.

Основная мотивация для секвенирования этих микроорганизмов связана с термостойкость из белки которые обычно денатурируют при высоком температура. Полная последовательность геном из S. solfataricus был завершен в 2001 году.[5] На одной хромосоме 2 992 245 пар оснований, которые кодируют 2 977 белки и обильные РНК. Одна треть S. solfataricus кодируемые белки не имеют гомологов в других геномах. Для остальных кодируемых белков 40% специфичны для Археи, 12% делятся с Бактерии, а 2,3% делятся с Эукария.;[6] 33% этих белков кодируется исключительно в Сульфолобус. Большое количество ORF (открытая рамка считывания) очень похожи в Термоплазма.[3]

Малые ядрышковые РНК (мяРНК), уже присутствующие у эукариот, также были идентифицированы в С. Сольфатарик и S.acidolcaldarius. Они уже известны своей ролью в посттранскрипционных модификациях и удалении интроны из рибосомной РНК в Eucarya.[7]

Геном Сульфолобус характеризуется наличием коротких тандемных повторов, вставок и повторяющихся элементов, он имеет широкий диапазон разнообразия, поскольку он имеет 200 различных элементов последовательности вставки IS.

Термофильная обратная гираза

Стабилизация двойной спирали против денатурации у архей обусловлена ​​присутствием особого специфического термофильного фермент, обратная гираза. Он был обнаружен у гипертермофильных и термофильных архей и бактерий. Есть два гены в Сульфолобус каждый из которых кодирует обратную гиразу.[8] Определяется атипичная ДНК топоизомеразы и основная деятельность состоит в производстве положительных суперспиралей в замкнутой круговой ДНК. Положительная суперспирализация важна для предотвращения образования открытых комплексов. Обратные спирали состоят из двух областей: первая - это геликаза подобным и вторым является топоизомераза I. Возможная роль обратной гиразы может заключаться в использовании положительной суперспирализации для сборки хроматиноподобных структур.[9] В 1997 году ученые обнаружили еще одну важную особенность Сульфолобус : этот микроорганизм содержит топоизомеразу типа II, называемую TopoVI, субъединица A которой гомологична мейотический фактор рекомбинации, Spo11 который играет преобладающую роль в инициации мейотической рекомбинации у всех Eucarya.[10][11]

S. solfataricus состоит из трех топоизомераз типа I, TopA и двух обратных гираз, TopR1 и TopR2, и одной топоизомеразы типа II, TopoVI.[12]

Белки, связывающие ДНК

В Phylum Crenarchaeota есть три белка, которые связывают малую бороздку ДНК подобно гистоны: Alba, Cren7 и Sso7d, которые изменены после процесса перевода. Они маленькие и были обнаружены у нескольких штаммов Sulfolobus, но не в другом геноме. Сульфолобус составляют 1-5% от общей суммы. Они могут иметь как структурные, так и регулирующие функции. Они похожи на человеческие белки HMG-бокса из-за их влияния на геномы, экспрессии и стабильности, а также на эпигенетические процессы.[13] У видов, лишенных гистонов, они могут быть ацетилированы и метилированы, как гистоны эукариот.[14][15][16][17] Сульфолобус Штаммы представляют различные специфические ДНК-связывающие белки, такие как семейство белков Sso7d. Они стабилизируют двойную спираль, предотвращая денатурация при высокой температуре, способствуя тем самым отжигу выше температура плавления.[18]

Главный компонент хроматина архей представлен белком семейства Sac10b, известным как Alba (ацетилирование снижает сродство связывания).[19][20] Эти белки представляют собой небольшие основные и димерные связывающие нуклеиновые кислоты белки. Кроме того, он законсервирован в большинстве секвенированных археальных геномов.[21][22] Состояние ацетилирования Alba, например, влияет на доступ к промотору и транскрипцию in vitro, тогда как состояние метилирования другого Сульфолобус белок хроматина, Sso7D, изменяется температурой культивирования.[23][24]

Работа группы Вольфрама Зиллига, представляющая ранние доказательства эукариотических характеристик транскрипции в Archea, с тех пор сделала Сульфолобус идеальная модельная система для изучения транскрипции. Недавние исследования на Sulfolobus, в дополнение к другим видам архей, в основном сосредоточены на составе, функции и регуляции аппарата транскрипции у этих организмов, а также на фундаментальных консервативных аспектах этого процесса как у Eucarya, так и у Archaea.[25]

Перенос ДНК

Контакт с Saccharolobus solfataricus к агентам, повреждающим ДНК УФ-облучение, блеомицин или же митомицин С вызывает агрегацию клеток.[26] Другие факторы физического стресса, такие как изменение pH или температурный сдвиг, не вызывают агрегации, что позволяет предположить, что индукция агрегации вызвана именно повреждением ДНК. Ajon et al.[27] показали, что УФ-индуцированная агрегация клеток опосредует обмен хромосомными маркерами с высокой частотой. Скорость рекомбинации превышала таковую неиндуцированных культур до трех порядков. Frols et al.[26][28] и Ajon et al.[27] выдвинули гипотезу, что процесс переноса ДНК, индуцируемый ультрафиолетом, и последующий гомологичный рекомбинационный Ремонт представляет собой важный механизм для поддержания целостности хромосом. Этот ответ может быть примитивной формой полового взаимодействия, подобной более хорошо изученной бактериальной трансформации, которая также связана с переносом ДНК между клетками, приводящим к гомологичной рекомбинационной репарации повреждений ДНК.[нужна цитата ]

Метаболизм

Sulfolobus solfataricus как известно, растет хемоорганотрофно в присутствии кислорода на различных органических соединениях, таких как сахара, спирты, аминокислоты и ароматические соединения, такие как фенол.[29]

Он использует модифицированный Entner-Doudroff путь окисления глюкозы, и образующиеся молекулы пирувата могут быть полностью минерализованы в Цикл TCA.[29]

Молекулярный кислород является единственным известным акцептором электронов в конце цепь передачи электронов.[30] Помимо органических молекул, это Archea виды могут также использовать сероводород[6] и элементарная сера как доноры электронов и исправить CO2, возможно, с помощью цикла HP / HB,[29] делая его также способным к химиоавтотрофической жизни. Недавние исследования также показали способность расти, хотя и медленно, к окислению молекулярного водорода.[1]

Ферредоксин

Ферредоксин предположительно действует как основной метаболический переносчик электронов в S. solfataricus. Это контрастирует с большинством видов бактерий и эукарий, которые обычно полагаются на НАДН в качестве основного переносчика электронов. S. solfataricus обладает сильными эукариотическими особенностями в сочетании со многими уникальными способностями архей. Результаты открытий пришли из различных методов их ДНК-механизмов, клеточных циклов и переходного аппарата. В целом, исследование явилось ярким примером различий, обнаруженных в кренархеи и эвриархеи.[6][31]

Экология

Среда обитания

S. solfataricus является экстремальным термофилом Archea, как и остальные виды рода Sulfolobus, он имеет оптимальные условия роста в районах с сильной вулканической активностью, с высокой температурой и очень кислым pH,[32] эти специфические условия типичны для вулканической области, такой как гейзер или терамловые источники, на самом деле наиболее изученными странами, где были обнаружены микроорганизмы, являются: США (Йеллоустонский национальный парк),[33] Новая Зеландия,[34] Остров и Италия, печально известные такими вулканическими явлениями. Исследование, проведенное группой индонезийских ученых, показало присутствие сообщества Sulfolobus также на Западной Яве, подтверждая, что высокие опасения, низкий уровень pH и присутствие серы являются необходимыми условиями для роста этих микробов.[35]

Фумарола вулкана Сольфатара - Кампания, Италия.

Закисление почвы

S. solfataricus способен окислять серу в соответствии с метаболической стратегией, одним из продуктов этих реакций является H + и, как следствие, это приводит к медленному окислению окружающей среды. Подкисление почвы усиливается в местах, где происходят выбросы загрязняющих веществ в результате промышленной деятельности, и этот процесс снижает количество гетеротрофных бактерий, участвующих в разложении, что является основой для повторного использования органических веществ и, в конечном итоге, для удобрения почвы.[36]

Биотехнология: использование ресурса Сульфолобус

Сегодня во многих сферах применения мы заинтересованы в использовании Sulfolobus sulfataricus в качестве источника ферментов термостабильности для исследований и диагностики, а также в пищевой, текстильной и чистящей промышленности, а также в целлюлозно-бумажной промышленности. Кроме того, этот фермент перегружен из-за его каталитического разнообразия, высокой стабильности pH и температуры, повышенной устойчивости к органическим растворителям и устойчивости к протеолизу.[37][38]

В настоящее время все большее значение приобретают тетраэфирные липиды, мембранные везикулы с антимикробными свойствами, компоненты трегалозы и новые β-галактоолигосахариды.[39]

β-галактозидаза

Термостабильный фермент β-галактозидаза изолированы от крайних термофильных архебактерий Sulfolobus solfataricus, штамм МТ-4.

Этот фермент используется во многих промышленных процессах жидкостей, содержащих лактозу, путем очистки и определения их физико-химических свойств.[40]

Протеазы

Промышленность заинтересована в стабильных протеазах, а также во многих изученных протеазах сульфолобусов.[41]

Активный аминопептидаза связанный с шаперонин Solfobulus solfataricus MT4 был описан.[42]

Соммаруга и др. (2014)[43] также улучшили стабильность и выход реакции хорошо охарактеризованного карбоксипептидаза из S.solfataricus MT4 с помощью магнитных наночастиц, иммобилизовавших фермент.

Эстеразы /Липазы

Новый термостабильный внеклеточный липолитический фермент серин арилэстераза который первоначально был обнаружен из-за их большого действия при гидролизе органофосфаты от термоацидофильного архея Sulfolobus solfataricus P1.[44]

Шаперонины

При реакции на температурный шок (50,4 ° C) в E.Coli клеток, крошечный теплый оглушающий белок (S.so-HSP20) из S.solfataricus P2 эффективно используется для улучшения толерантности.[45]

В связи с тем, что шаперонин Ssocpn (920 кДа), в который входят АТФ, K + и Mg2 +, но не продуцировал каких-либо дополнительных белков в S.solfataricus для доставки свернутых и динамических белков из денатурированных материалов, он хранился в ячейке для ультрафильтрации, в то время как ренатурированные субстраты перемещались через пленку.[46]

Липосомы

Из-за своего тетраэфирного липидного материала мембрана чрезвычайно термофильных архей уникальна по своему составу. Липиды архей - многообещающий источник липосом с исключительной стабильностью температуры и pH, а также герметичностью против утечки растворенного вещества. Такие археосомы - возможные инструменты для доставки лекарств, вакцин и генов.[47]

Рекомендации

  1. ^ а б Сакаи HD, Куросава Н. (апрель 2018 г.). "Saccharolobus caldissimus gen. Nov., Sp. Nov., Факультативно анаэробный железоредуцирующий гипертермофильный архон, выделенный из кислых горячих источников на суше, и реклассификация Sulfolobus solfataricus как Saccharolobus solfataricus comb. Nov. И Sulfolobacata shibata shibata. ". Международный журнал систематической и эволюционной микробиологии. 68 (4): 1271–1278. Дои:10.1099 / ijsem.0.002665. PMID  29485400.
  2. ^ "Где был впервые обнаружен Sulfolobus solfataricus?". www.intercept.cnrs.fr.
  3. ^ а б Чарамелла М, Пизани FM, Росси М (август 2002 г.). «Молекулярная биология экстремофилов: недавний прогресс гипертермофильных архей Sulfolobus». Антони ван Левенгук. 81 (1–4): 85–97. Дои:10.1023 / А: 1020577510469. PMID  12448708.
  4. ^ Брок Т.Д., Брок К.М., Belly RT, Weiss RL (1972). «Sulfolobus: новый род сероокисляющих бактерий, живущих при низком pH и высокой температуре». Archiv für Mikrobiologie. 84 (1): 54–68. Дои:10.1007 / bf00408082. PMID  4559703.
  5. ^ Шарлебуа Р.Л., Гаастерленд Т., Раган М.А., Дулиттл В.Ф., Сенсен С.В. (июнь 1996 г.). «Проект генома Sulfolobus solfataricus P2». Письма FEBS. 389 (1): 88–91. Дои:10.1016 / s0014-5793 (97) 81281-1. PMID  8682213.
  6. ^ а б c Ше К., Сингх Р.К., Конфалониери Ф., Живанович Ю., Аллард Дж., Авайез М.Дж. и др. (Июль 2001 г.). «Полный геном кренархея Sulfolobus solfataricus P2». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки. 98 (14): 7835–40. Bibcode:2001PNAS ... 98.7835S. Дои:10.1073 / pnas.141222098. ЧВК  35428. PMID  11427726.
  7. ^ Омер А.Д., Лоу TM, Рассел А.Г., Эбхардт Х., Эдди С.Р., Деннис П.П. (апрель 2000 г.). «Гомологи малых ядрышковых РНК у архей». Наука. 288 (5465): 517–22. Bibcode:2000Sci ... 288..517O. Дои:10.1126 / science.288.5465.517. PMID  10775111.
  8. ^ Couturier M, Bizard AH, Garnier F, Nadal M (сентябрь 2014 г.). «Понимание клеточного участия двух обратных извилин из гипертермофильной археи Sulfolobus solfataricus». BMC Молекулярная биология. 15 (1): 18. Дои:10.1186/1471-2199-15-18. ЧВК  4183072. PMID  25200003.
  9. ^ Déclais AC, Marsault J, Confalonieri F, de La Tour CB, Duguet M (июнь 2000 г.). «Обратная гираза, два домена тесно взаимодействуют, способствуя положительной суперспирализации». Журнал биологической химии. 275 (26): 19498–504. Дои:10.1074 / jbc.m910091199. PMID  10748189.
  10. ^ Бергерат А., де Масси Б., Гадель Д., Варутас П.К., Николя А., Фортер П. (март 1997 г.). «Атипичная топоизомераза II из архей с последствиями для мейотической рекомбинации». Природа. 386 (6623): 414–7. Bibcode:1997Натура.386..414Б. Дои:10.1038 / 386414a0. PMID  9121560.
  11. ^ Фортер П., Бержерат А., Лопес-Гарсия П. (май 1996 г.). «Уникальная топология ДНК и ДНК-топоизомеразы гипертермофильных архей». Обзор микробиологии FEMS. 18 (2–3): 237–48. Дои:10.1111 / j.1574-6976.1996.tb00240.x. PMID  8639331.
  12. ^ Couturier M, Gadelle D, Forterre P, Nadal M, Garnier F (ноябрь 2019 г.). «Обратная гираза TopR1 отвечает за гомеостатический контроль суперспирализации ДНК у гипертермофильных архей Sulfolobus solfataricus». Молекулярная микробиология. 113 (2): 356–368. Дои:10.1111 / мм. 14424. PMID  31713907.
  13. ^ Маларки К.С., Черчилль М.Э. (декабрь 2012 г.). «Групповой ящик с высокой мобильностью: лучший полезный игрок ячейки». Тенденции в биохимических науках. 37 (12): 553–62. Дои:10.1016 / j.tibs.2012.09.003. ЧВК  4437563. PMID  23153957.
  14. ^ Пейн С., Маккарти С., Джонсон Т., Норт Е., Блюм П. (ноябрь 2018 г.). "Sulfolobus solfataricus". Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки. 115 (48): 12271–12276. Дои:10.1073 / pnas.1808221115. ЧВК  6275508. PMID  30425171.
  15. ^ Guagliardi A, Cerchia L, Moracci M, Rossi M (октябрь 2000 г.). «Хромосомный белок sso7d кренархея Sulfolobus solfataricus спасает агрегированные белки зависимым от гидролиза АТФ образом». Журнал биологической химии. 275 (41): 31813–8. Дои:10.1074 / jbc.m002122200. PMID  10908560.
  16. ^ Шехи Е., Граната В., Дель Веккьо П., Бароне Г., Фузи П., Тортора П., Грациано Г. (июль 2003 г.). «Термическая стабильность и ДНК-связывающая активность вариантной формы белка Sso7d из архона Sulfolobus solfataricus, усеченного по лейцину 54». Биохимия. 42 (27): 8362–8. Дои:10.1021 / bi034520t. PMID  12846585.
  17. ^ Бауманн Х., Кнапп С., Каршикофф А., Ладенштейн Р., Хард Т. (апрель 1995 г.). «ДНК-связывающая поверхность белка Sso7d из Sulfolobus solfataricus». Журнал молекулярной биологии. 247 (5): 840–6. Дои:10.1006 / jmbi.1995.0184. PMID  7723036.
  18. ^ Guagliardi A, Napoli A, Rossi M, Ciaramella M (апрель 1997 г.). «Отжиг комплементарных цепей ДНК выше точки плавления дуплекса, вызванный архейным белком». Журнал молекулярной биологии. 267 (4): 841–8. Дои:10.1006 / jmbi.1996.0873. PMID  9135116.
  19. ^ Forterre P, Confalonieri F, Knapp S (май 1999 г.). «Идентификация гена, кодирующего специфичные для архей ДНК-связывающие белки семейства Sac10b». Молекулярная микробиология. 32 (3): 669–70. Дои:10.1046 / j.1365-2958.1999.01366.x. PMID  10320587.
  20. ^ Сюэ Х, Го Р, Вэнь И, Лю Д., Хуан Л. (июль 2000 г.). «Обильный ДНК-связывающий белок из гипертермофильной археи Sulfolobus shibatae влияет на суперспирализацию ДНК в зависимости от температуры». Журнал бактериологии. 182 (14): 3929–33. Дои:10.1128 / JB.182.14.3929-3933.2000. ЧВК  94576. PMID  10869069.
  21. ^ Гоял М., Банерджи С., Наг С., Бандйопадхьяй У. (май 2016 г.). «Семейство белков Alba: структура и функции». Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Белки и протеомика. 1864 (5): 570–83. Дои:10.1016 / j.bbapap.2016.02.015. PMID  26900088.
  22. ^ Уордлворт Б.Н., Рассел Р.Дж., Белл С.Д., Тейлор Г.Л., Уайт М.Ф. (сентябрь 2002 г.). «Структура Alba: белок хроматина архей, модулированный ацетилированием». Журнал EMBO. 21 (17): 4654–62. Дои:10.1093 / emboj / cdf465. ЧВК  125410. PMID  12198167.
  23. ^ Белл С.Д., Боттинг СН, Уордлворт Б.Н., Джексон С.П., Уайт М.Ф. (апрель 2002 г.). «Взаимодействие Alba, консервативного белка хроматина архей, с Sir2 и его регулирование путем ацетилирования». Наука. 296 (5565): 148–51. Bibcode:2002Наука ... 296..148B. Дои:10.1126 / science.1070506. PMID  11935028.
  24. ^ Бауманн Х., Кнапп С., Лундбек Т., Ладенштейн Р., Хард Т. (ноябрь 1994 г.). «Структура раствора и ДНК-связывающие свойства термостабильного белка из археи Sulfolobus solfataricus». Структурная биология природы. 1 (11): 808–19. Дои:10.1038 / nsb1194-808. PMID  7634092.
  25. ^ Зиллиг В., Стеттер К.О., Янекович Д. (июнь 1979 г.). «ДНК-зависимая РНК-полимераза из архебактерии Sulfolobus acidocaldarius». Европейский журнал биохимии. 96 (3): 597–604. Дои:10.1111 / j.1432-1033.1979.tb13074.x. PMID  380989.
  26. ^ а б Fröls S, Ajon M, Wagner M, Teichmann D, Zolghadr B, Folea M и др. (Ноябрь 2008 г.). «Индуцируемая УФ-излучением клеточная агрегация гипертермофильной археи Sulfolobus solfataricus опосредована образованием пилей» (PDF). Молекулярная микробиология. 70 (4): 938–52. Дои:10.1111 / j.1365-2958.2008.06459.x. PMID  18990182.
  27. ^ а б Ajon M, Fröls S, van Wolferen M, Stoecker K, Teichmann D, Driessen AJ и др. (Ноябрь 2011 г.). «УФ-индуцируемый обмен ДНК в гипертермофильных архее, опосредованный пилями типа IV» (PDF). Молекулярная микробиология. 82 (4): 807–17. Дои:10.1111 / j.1365-2958.2011.07861.x. PMID  21999488.
  28. ^ Fröls S, White MF, Schleper C (февраль 2009 г.). «Реакции на УФ-повреждение у модельного архея Sulfolobus solfataricus». Сделки Биохимического Общества. 37 (Pt 1): 36–41. Дои:10.1042 / BST0370036. PMID  19143598.
  29. ^ а б c Улас Т., Ример С.А., Запарты М., Зиберс Б., Шомбург Д. (31.08.2012). «Реконструкция в масштабе генома и анализ метаболической сети гипертермофильной археи Sulfolobus solfataricus». PLOS ONE. 7 (8): e43401. Bibcode:2012PLoSO ... 743401U. Дои:10.1371 / journal.pone.0043401. ЧВК  3432047. PMID  22952675.
  30. ^ Саймон Дж., Вальтер Дж., Забети Н., Комбет-Блан Й., Аурия Р., ван дер Ост Дж, Казалот Л. (октябрь 2009 г.). «Влияние концентрации O2 на Sulfolobus solfataricus P2». Письма о микробиологии FEMS. 299 (2): 255–60. Дои:10.1111 / j.1574-6968.2009.01759.x. PMID  19735462.
  31. ^ Циллиг В., Стеттер К.О., Вундерл С., Шульц В., Присс Н., Шольц I. (апрель 1980 г.). «Группа Sulfolobus-« Caldariella »: таксономия на основе структуры ДНК-зависимых РНК-полимераз». Архив микробиологии. 125 (3): 259–69. Дои:10.1007 / BF00446886.
  32. ^ Grogan DW (декабрь 1989 г.). «Фенотипическая характеристика архебактерий рода Sulfolobus: сравнение пяти штаммов дикого типа». Журнал бактериологии. 171 (12): 6710–9. Дои:10.1128 / jb.171.12.6710-6719.1989. ЧВК  210567. PMID  2512283.
  33. ^ «Сульфолобус». Microbewiki.
  34. ^ Хетцер А., Морган Х.В., Макдональд И.Р., Доуни С.Дж. (июль 2007 г.). «Микробная жизнь в бассейне с шампанским, геотермальный источник в Вайотапу, Новая Зеландия». Экстремофилов. 11 (4): 605–14. Дои:10.1007 / s00792-007-0073-2. PMID  17426919.
  35. ^ Адитиавати П., Йохандини Х., Мадаянти Ф. (2009). «Микробное разнообразие кислого горячего источника (кавах худжан B) в геотермальном поле области Камоджанг, западная ява-индонезия». Открытый журнал микробиологии. 3: 58–66. Дои:10.2174/1874285800903010058. ЧВК  2681175. PMID  19440252.
  36. ^ Брайант RD, Горди EA, Laishley EJ (1979). «Влияние закисления почвы на почвенную микрофлору». Загрязнение воды, воздуха и почвы. 11 (4): 437. Bibcode:1979WASP ... 11..437B. Дои:10.1007 / BF00283435.
  37. ^ Степанкова, Вероника (14 октября 2013 г.). «Стратегии стабилизации ферментов в органических растворителях». Катализ ACS. 3 (12): 2823–2836. Дои:10.1021 / cs400684x.
  38. ^ ДАНИЭЛЬ, Р. М. (1982). «Корреляция между термостабильностью белка и устойчивостью к протеолизу». Биохимический журнал. 207 (3): 641–644. Дои:10.1042 / bj2070641. ЧВК  1153914. PMID  6819862.
  39. ^ Квехенбергер, Джулиан (2017). «Sulfolobus - потенциальный ключевой организм в биотехнологии будущего». Границы микробиологии. 8: 2474. Дои:10.3389 / fmicb.2017.02474. ЧВК  5733018. PMID  29312184.
  40. ^ М. ПИСАНИ, Франческа (1990). «Термостабильная β-галактозидаза из архебактерии Sulfolobus solfataricus». Европейский журнал биохимии. 187 (2): 321–328. Дои:10.1111 / j.1432-1033.1990.tb15308.x. PMID  2105216.
  41. ^ Ханнер, Маркус (1990). Выделение и характеристика внутриклеточной аминопептидазы из экстремально термофильной архебактерии Sulfolobus solfataricus. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Общие предметы. 1033. Эльзевир Б.В. С. 148–153. Дои:10.1016 / 0304-4165 (90) 90005-Н. ISBN  0117536121. PMID  2106344.
  42. ^ Кондо, Ивано; Руджеро, Давиде (1998). «Новая аминопептидаза, связанная с шаперонином 60 кДа у термофильных архей Sulfolobus solfataricus. Mol. Microbiol». Молекулярная микробиология. 29 (3): 775–785. Дои:10.1046 / j.1365-2958.1998.00971.x. PMID  9723917.
  43. ^ Соммаруга, Сильвия (2014). «Ммобилизация карбоксипептидазы из Sulfolobus solfataricus на магнитных наночастицах улучшает стабильность и функциональность фермента в органических средах. BMC Biotechnol». BMC Biotechnology. 14 (1): 82. Дои:10.1186/1472-6750-14-82. ЧВК  4177664. PMID  25193105.
  44. ^ Парк, Ён-июн (2016). «Очистка и характеристика нового индуцибельного термостабильного внеклеточного липолитического фермента из термоацидофильной археи Sulfolobus solfataricus P1». Журнал молекулярного катализа B: ферментативный. 124: 11–19. Дои:10.1016 / j.molcatb.2015.11.023.
  45. ^ Ли, Донг-Чхоль (август 2011 г.). «Термотолерантность и функция молекулярных шаперонов небольшого белка теплового шока HSP20 из гипертермофильных архей, Sulfolobus solfataricus P2. Шапероны клеточного стресса». Клеточный стресс и шапероны. 17 (1): 103–108. Дои:10.1007 / s12192-011-0289-z. ЧВК  3227843. PMID  21853411.
  46. ^ Черкия, Лаура (7 августа 1999 г.). «Реактор на основе архейного шаперонина для ренатурации денатурированных белков. Экстремофил». Экстремофилы: жизнь в экстремальных условиях. 4 (1): 1–7. Дои:10.1007 / s007920050001. PMID  10741831.
  47. ^ Б. Патель, Гиришчандра (1999). «Археобактериальные липидные липидные эфиры (археосомы) как новые системы доставки вакцин и лекарств». Критические обзоры в биотехнологии. 19 (4): 317–357. Дои:10.1080/0738-859991229170. PMID  10723627.

дальнейшее чтение

'

внешняя ссылка