Венепункция - Venipuncture

"Кровь" перенаправляется сюда. Для книги см. Рисование крови.
Венепункция
Видео о венепункции

В медицине венепункция или же венепункция это процесс получения внутривенного доступа с целью венозного забор крови (также называемый флеботомия ) или же внутривенная терапия. В здравоохранении эту процедуру выполняют ученые-медицинские лаборатории, практикующие врачи, немного ЕМТ, парамедики, флеботомисты, диализ техники и другой медперсонал.[1] В Ветеринария, процедура выполняется ветеринары и ветеринарные техники.

Для получения точных лабораторных результатов важно следовать стандартной процедуре взятия образцов крови. Любая ошибка при сборе крови или наполнении пробирок может привести к ошибочным результатам лабораторных исследований.[2]

Венепункция является одной из наиболее часто выполняемых инвазивных процедур и проводится по любой из пяти причин:

  1. для получения крови для диагностических целей;
  2. контролировать уровни компонентов крови;[3]
  3. для назначения терапевтического лечения, включая лекарства, питание или химиотерапию;
  4. для удаления крови из-за повышенного уровня железа или эритроцитов (красные кровяные тельца ); или же
  5. для сбора крови для дальнейшего использования, в основном переливание либо в доноре или же в другом человеке.

Анализ крови является важным диагностическим инструментом, доступным врачам в сфере здравоохранения.

Кровь чаще всего берут из поверхностных вен верхней конечности.[1] В срединная локтевая вена, который находится внутри локтевая ямка кпереди от локтя, близко к поверхности кожи без большого количества крупных нервов, расположенных поблизости. Другие вены, которые можно использовать в локтевой ямке для венепункции, включают: головной, базилик, и срединные антебрахиальные вены.[4]

Незначительное количество крови может быть взято отбор проб из пальца и собираются у младенцев с помощью укол или из вен скальпа с крылатая игла для инфузии.

Флеботомия (надрез вены) также является лечением некоторых заболеваний, таких как: гемохроматоз и первичный и вторичный полицитемия.

Осложнения

Исследование доноров крови 1996 года (при сдаче крови используется более крупная игла, чем при рутинной венепункции) обнаружило, что 1 из 6300 доноров получил повреждение нерва.[5]

Оборудование

Существует много способов забора крови из вены, и используемый метод зависит от возраста человека, доступного оборудования и типа необходимых анализов.

Наиболее сбор крови в США, Великобритании, Канаде и Гонконге используется система откачанных труб (две распространенные системы: Vacutainer (Бектон, Дикинсон и компания) и Vacuette (Greiner Bio-One). Оборудование состоит из пластикового адаптера, также известного как трубка или иглодержатель / втулка, иглы для подкожных инъекций и вакуумной трубки. При определенных обстоятельствах можно использовать шприц, часто с игла-бабочка, который представляет собой пластиковый катетер, прикрепленный к короткой игле. В развивающихся странах система откачанных трубок является предпочтительным методом забора крови.

С откачанными или вакуумными трубками

Бутылки с кровью Vacutainer

Greiner Bio-One произвела первую в истории пластиковую вакуумную пробирку для забора крови в 1985 году под торговой маркой VACUETTE. Сегодня многие компании продают электронные лампы, поскольку патент на это устройство теперь является общественным достоянием. Эти трубки изготавливаются с определенным объемом газа, удаляемым из герметичной трубки. Когда в пробку вставляется игла из втулки или передаточного устройства, вакуум трубки автоматически втягивает необходимый объем крови.

Базовая система вакуумных трубок (ETS) состоит из иглы, держателя трубок и вакуумированных трубок. Игла прикрепляется к держателю трубки флеботомистом перед забором или может поступать от производителя как единое целое. Игла проходит через конец держателя трубки и имеет иглу на каждом конце. После первой очистки места венепункции и наложения жгута флеботомист снимает колпачок с иглы, прикрепленной к держателю трубки, вводит иглу в вену, затем вставляет эвакуированные трубки в держатель трубки, где пробка трубки протыкается задним концом трубки. иголка. Затем вакуум в трубке автоматически забирает необходимую кровь прямо из вены. К одной игле можно присоединять и снимать несколько вакуумных трубок по очереди, что позволяет получить несколько образцов за одну процедуру. Это возможно благодаря многогранной втулке для образцов, которая представляет собой гибкую резиновую накладку на задний конец иглы. канюля который закрывает иглу до тех пор, пока она не будет вытолкнута из пути. Это препятствует свободному стеканию крови из задней части иглы, вставленной в вену, поскольку каждая пробирка удаляется, а следующая прокалывается. OSHA Правила техники безопасности требуют, чтобы иглы или держатели для трубок были оснащены предохранительным устройством, закрывающим иглу после процедуры, чтобы предотвратить случайное уколом иглы.[6]

Также доступны фитинги и переходники, используемые для заполнения вакуумированных трубок из наборов игл-бабочек и шприцев.

Флеботомист может выбрать из нескольких игл. Наиболее часто используются следующие: игла 21 г (зеленый верх), игла 22 г (черный верх), игла-бабочка 21 г (зеленая этикетка), игла-бабочка 23 г (голубая этикетка) и игла-бабочка 25 г (оранжевая или темная). синяя этикетка) игла-бабочка (однако эта игла используется только в педиатрии или в крайних случаях, поскольку она настолько мала, что часто может привести к гемолизу образца крови). Существуют также пробирки и бутылки различных размеров и объемов для различных требований к испытаниям.[7]

Добавки и порядок розыгрыша

Пробирки, в которые собирается кровь, могут содержать одну или несколько из нескольких добавок. Как правило, тесты, требующие цельной крови, требуют образцов крови, собранных в пробирки, содержащие антикоагулянт в той или иной форме EDTA. EDTA хелаты кальций для предотвращения свертывания крови. ЭДТА предпочтительнее для гематологических тестов, потому что она наносит минимальный ущерб морфологии клеток. Цитрат натрия - это антикоагулянт, используемый в образцах, собранных для тестов на коагуляцию. Большинство химических и иммунологических тестов проводится на сыворотке, которая образуется путем свертывания и последующего отделения образца крови на центрифуге. Эти образцы собирают либо в пробирку без добавки, либо в пробирку, содержащую свертывание активатор. Этот активатор свертывания крови может мешать некоторым анализы, поэтому в этих случаях рекомендуется использовать простую трубку, но это задержит тестирование. Пробирки, содержащие гепарин лития или гепарин натрия, также обычно используются для различных химических тестов, поскольку они не требуют свертывания крови и могут быть центрифугированы сразу после сбора. Комбинация фторида натрия и оксалата калия используется для тестов на глюкозу, так как эти добавки предотвращают свертывание крови и останавливают гликолоз, так что уровень глюкозы в крови сохраняется после сбора.[8] Другая специальная пробирка - непрозрачная пробирка янтарного цвета, используемая для сбора крови на светочувствительные аналиты, такие как билирубин.

Пробирки помечены добавкой, которую они содержат, но пробки на каждой пробирке также имеют цветовую маркировку в соответствии с добавкой. Хотя цвета у разных производителей различаются, цвета пробок обычно связаны с каждой добавкой, как указано ниже. Поскольку добавки из каждой пробирки можно оставлять на игле, используемой для заполнения пробирок, их нужно набирать в определенном порядке, чтобы гарантировать, что перекрестное загрязнение не повлияет отрицательно на тестирование образцов, если необходимо взять несколько пробирок одновременно. «Порядок розыгрыша» зависит от метода сбора. Ниже в порядке извлечения, который обычно требуется для метода сбора с помощью системы вакуумных трубок (ETS), приведены наиболее распространенные пробирки с указанием добавок и цветов:[9][10]

Vacutainer /пробирка типы для венепункция /флеботомия   редактировать
Цвет или тип крышки пробиркиДобавкаИспользование и комментарии
Культура крови бутылкаСульфонат натрия полианэтол (антикоагулянт ) и ростовые среды для микроорганизмовОбычно рисуется в первую очередь для минимального риска загрязнения.[11] Обычно за один забор крови берут две бутылки; один для аэробные организмы и один для анаэробные организмы.[12]
Светло-синийНатрий цитрат (антикоагулянт)Коагуляционные тесты Такие как протромбиновое время (PT) и частичное тромбопластиновое время (PTT) и тромбиновое время (TT). Трубка должна быть заполнена на 100%.
Простой красныйБез добавкиСыворотка: Общая активность комплемента, криоглобулины
ЗолотоАктиватор сгустка и отделяющая сыворотка гель[13]Трубка для отделения сыворотки: Переворачивание трубок способствует свертыванию крови. Большинство биохимических, эндокринных и серологических тестов, включая гепатит и ВИЧ.
Темно-зеленыйНатрий гепарин (антикоагулянт)Хромосомное тестирование, аммиак, лактат, HLA набор текста
мятно-зеленыйЛитий гепарин (антикоагулянт)Плазма. Переворачивание трубок предотвращает свертывание
Лаванда («пурпурный»)EDTA (хелатор / антикоагулянт)Цельная кровь: CBC, СОЭ, уровни в крови такролимус и циклоспорин, антитела к тромбоцитам, Тест Кумбса, проточной цитометрии
РозовыйEDTA (хелатор / антикоагулянт)Определение группы крови и перекрестное сопоставление, непосредственный Тест Кумбса, ВИЧ вирусная нагрузка
Королевский синийEDTA (хелатор / антикоагулянт)Микроэлементы, тяжелые металлы, уровень большинства наркотиков, токсикология
ЗагарEDTA (хелатор / антикоагулянт)Свинец
серыйГлюкоза, лактат[14]
ЖелтыйКислота-цитрат-декстроза А (антикоагулянт)Типирование ткани, Исследования ДНК, ВИЧ культуры
Жемчужно-белый")Разделительный гель и (K2)EDTAПЦР за аденовирус, токсоплазма и HHV-6

У детей

Дальнейшая информация: Обезболивание у детей

Использование лидокаина ионтофорез эффективен для уменьшения боли и облегчения стресса во время венепункции у детей.[15] Безыгольный порошок лигнокаин Система доставки снижает болевые ощущения при венепункции у детей.[16][17] Быстрая кожная анестезия может быть достигнута путем инфильтрации местного анестетика, но она может вызвать беспокойство у детей, напуганных иглами, или деформировать кожу, затрудняя доступ к сосудам и увеличивая риск контакта игл с медицинскими работниками. Кожная анестезия также может быть достигнута без игл путем местного применения местных анестетиков или ионтофореза лидокаина. Напротив, неинвазивная дермальная анестезия может быть установлена ​​за 5-15 минут без искажения подлежащих тканей с помощью лидокаин-ионтофореза, когда постоянный электрический ток способствует проникновению через кожу положительно заряженных молекул лидокаина при помещении под положительным электродом.

Одно исследование пришло к выводу, что ионтофоретическое введение лидокаин был безопасен и эффективен при проведении кожной анестезии при венепункции у детей 6–17 лет. Этот метод применим не ко всем детям. Будущие исследования могут предоставить информацию о минимальной эффективной дозе ионтофоретика для кожной анестезии у детей и сравнение анестезирующей эффективности и удовлетворенности лидокаином ионтофореза с местными анестезирующими кремами и подкожной инфильтрацией.[15]

Немедикаментозные методы лечения боли, связанной с венепункцией у детей, включают: гипноз и отвлечение. Эти методы лечения уменьшали боль, о которой сообщал сам, и в сочетании с когнитивно-поведенческая терапия (КПТ) уменьшение боли было еще больше. Другие вмешательства оказались неэффективными, и это внушение, выдувание и отвлечение внимания с помощью коучинга родителей, не отличались от контроля боли и дистресса.[18]

С иглой и шприцем

Некоторые медицинские работники предпочитают использовать шприц игольчатая техника венепункции. Sarstedt производит систему взятия крови (S-Monovette), которая использует этот принцип.[19] Этот метод может быть предпочтительным для пожилых людей, людей с онкологическими заболеваниями, тяжелыми ожогами, ожирением или с ненадежными или хрупкими венами. Поскольку шприцы управляются вручную, степень всасывания можно легко контролировать. Это особенно полезно, когда вены маленькие, которые могут разрушиться при отсасывании откачанной трубки. У детей или при других обстоятельствах, когда количество взятой крови может быть ограничено, может быть полезно знать, сколько крови можно получить, прежде чем распределять ее среди различных добавок, которые потребуются лаборатории. Другой альтернативой является забор крови через постоянные канюли. [20]

Посев крови

Бывают случаи, когда требуется забор крови. Посев определит, есть ли в крови патогены. Обычно кровь стерильна. При заборе крови из культур используйте стерильный раствор, например Бетадин скорее, чем алкоголь. Это делается в стерильных перчатках, не вытирая хирургический раствор, не касаясь места прокола и не нарушая стерильный процесс. Жизненно важно, чтобы процедура проводилась как можно более стерильно, учитывая постоянное присутствие кожи. комменсалы в культурах крови может указывать эндокардит но чаще всего они обнаруживаются как загрязнители. Рекомендуется использовать абразивный метод подготовки кожи. Это удаляет верхние слои омертвевших клеток кожи вместе с заражающими их бактериями.[21] Повидон-йод традиционно использовался, но в Великобритании 2% хлоргексидин в 70% растворе этанола или изопропилового спирта, и нужно дать ему время высохнуть. Крышки любых емкостей, используемых при взятии посевов крови, также следует продезинфицировать аналогичным раствором. Некоторые лаборатории будут активно препятствовать использованию йода там, где считается, что йод разрушает резиновую пробку, через которую кровь попадает в бутылку, позволяя загрязнениям проникать в контейнер.

Кровь собирается в специальные транспортные бутыли, которые похожи на вакуумные трубки, но имеют другую форму. Флакон для гемокультуры содержит транспортную среду для сохранения любых присутствующих микроорганизмов во время их транспортировки в лабораторию для посева. Потому что неизвестно, являются ли возбудители анаэробный (жить без кислорода) или аэробный (живущих с кислородом), кровь собирается для проверки обоих. Сначала наполняется аэробный баллон, а затем анаэробный баллон. Однако, если сбор проводится с помощью шприца, сначала заполняется анаэробный флакон. Если используется набор для сбора бабочек, сначала заполняется аэробный баллон, чтобы весь воздух из трубки попал в кислородсодержащий баллон.

Специально разработанные флаконы для забора культур крови исключают необходимость использования шприца или метода забора бабочки. Эти специально разработанные флаконы имеют длинные горлышки, которые подходят для держателей вакуумированных пробирок, используемых для регулярного взятия венепункций. Эти бутыли также позволяют собирать другие образцы крови через откачанные пробирки без дополнительной венепункции.

Количество собираемой крови имеет решающее значение для оптимального восстановления микроорганизмов. Типично до 10 мл крови, но может варьироваться в зависимости от рекомендаций производителя емкости для забора крови. Сбор от младенцев и детей от 1 до 5 мл. Если будет собрано слишком мало крови, соотношение крови и питательного бульона будет препятствовать росту микроорганизмов. Если будет собрано слишком много крови, существует риск развития анемии, вызванной больницей, и соотношение между кровью и питательными веществами изменится в противоположном направлении, что также не способствует оптимальному росту.

Затем флаконы инкубируют в специализированных отделениях в течение 24 часов, прежде чем лаборант изучит и / или протестирует их. Этот шаг позволяет очень небольшому количеству бактерий (потенциально 1 или 2 организма) размножаться до уровня, достаточного для идентификации +/- тестирования устойчивости к антибиотикам. Современные флаконы для посева крови имеют индикатор в основании, который меняет цвет при наличии роста бактерий и может автоматически считываться машиной. (По этой причине наклейки со штрих-кодом, найденные на этих бутылках, не следует удалять, поскольку они используются автоматизированными системами лаборатории.)

Взятие образцов крови у животных

Образцы крови живых лабораторных животных можно собирать следующими методами:[22][23]

  • Сбор крови без анестезии:
    • Подкожная вена (крыса, мыши, морская свинка)
    • Дорсальная педальная вена (крыса, мыши)
  • Сбор крови, требующий анестезии (местная / общая анестезия):
    • Хвостовая вена (крыса, мышь)
    • Хвост (мыши)
    • Орбитальный синус (крысы, мыши)[24]
    • Яремная вена (крыса, мыши)
    • Временная канюля (крыса, мыши)
    • Канюляция кровеносных сосудов (морская свинка, хорек)
    • Вена предплюсны (морская свинка)
    • Краевая ушная вена или артерия (кролик)
  • Терминальная процедура:
    • Пункция сердца (крыса, мыши, морская свинка, кролик, хорек)
    • Орбитальный синус (крысы, мыши)
    • Задняя полая вена (крысы, мыши)

У экспериментальных животных очень важен объем забора крови. Весь нетерминальный забор крови без замены жидкости ограничивается до 10% от общего объема циркулирующей крови у здоровых, нормальных взрослых животных за один раз, и сбор может быть повторен через три-четыре недели. Если через короткие промежутки времени требуются повторные пробы крови, каждые 24 часа можно брать максимум 0,6 мл / кг / день или 1,0% от общего объема крови животного. Расчетный объем крови у взрослых животных составляет от 55 до 70 мл / кг массы тела. Следует проявлять осторожность с животными старшего возраста и с ожирением. Если объем сбора крови превышает более 10% от общего объема крови, может потребоваться восполнение жидкости. Раствор Рингера с лактатом (LRS) рекомендован Национальными институтами здравоохранения (NIH) как лучший заменитель жидкости. Если объем взятой крови превышает более 30% от общего объема циркулирующей крови, следует принять соответствующие меры, чтобы животное не страдало гиповолемией.[23]

Тесты на алкоголь в крови

Как правило, не рекомендуется использовать изопропиловый спирт для очистки места венепункции при взятии пробы на алкоголь в крови тест. Это было связано в основном с потенциальными правовыми последствиями, связанными с использованием чистящих средств на спиртовой основе, которые теоретически могут повлиять на анализ. Было продано множество полицейских наборов для сбора алкоголя, которые включают консервант фторид натрия / оксалат калия и очищающие средства на безалкогольной основе для обеспечения надлежащего сбора. Используя горячую воду с мылом или повидон-йод в этом случае рекомендуется использовать мазок в качестве альтернативы изопропиловому спирту.

Смотрите также

Рекомендации

  1. ^ а б Хиггинс, Дэн (28 сентября 2004 г.). «Венепунктура». Время кормления. 100 (39): 30–1. PMID  15500234.
  2. ^ Дг, Дайял. «ПОРЯДОК ЗАБОРА КРОВИ ДЛЯ ГЕМОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ». Бионаука Пакистан. BioScience Пакистан. ISSN  2521-5760.
  3. ^ Лавери, I; Инграм, П. (август 2005 г.). «Венепунктура: лучшая практика». Nurs Stand. 19 (49): 55–65. Дои:10.7748 / нс2005.08.19.49.55.c3936. PMID  16134421.
  4. ^ Ялонго, Криштиану; Бернардини, Серджио (15.02.2016). «Флеботомия, мост между лабораторией и пациентом». Биохимия Медика. 26 (1): 17–33. Дои:10.11613 / BM.2016.002. ISSN  1330-0962. ЧВК  4783087. PMID  26981016.
  5. ^ "'Небольшое жало может стать изнурительной травмой ". Получено 25 марта 2020.
  6. ^ Макколл, Рут (2020). Основы флеботомии (7-е изд.). Wolters Kluwer. п. 193. ISBN  9781496387073.
  7. ^ Перри, Салли (2007). «Спросите лабораторию: гемолизируйте образцы крови». Nursing.advanceweb.com. Получено 2013-12-29.
  8. ^ а б Кастеллини М.А., Кастеллини Дж.М., Кирби В.Л. (1992). «Влияние стандартных антикоагулянтов и процедур хранения на уровень глюкозы в плазме у тюленей». J Am Vet Med Assoc. 201 (1): 145–8. PMID  1644639.
  9. ^ "Коллекция". www.osfhealthcare.org. Получено 2019-12-08.
  10. ^ Кристофер Паркер (31.01.2019). «Услуги по флеботомии». Школа медицины Университета Северной Каролины.
  11. ^ Pagana, KD; Pagana, TJ; Пагана, Теннесси (19 сентября 2014 г.). Справочник Мосби по диагностическим и лабораторным исследованиям - электронная книга. Elsevier Health Sciences. п. xiii. ISBN  978-0-323-22592-2.
  12. ^ «Глава 3.4.1: Посев крови; общее обнаружение и интерпретация». Справочник по процедурам клинической микробиологии. Вайли. 6 августа 2020. ISBN  978-1-55581-881-4.
  13. ^ «Требования к образцам / контейнеры». Патология и лабораторная медицина, Медицинский факультет UCI. Получено 2020-09-10.
  14. ^ Амитава Дасгупта; Хорхе Л. Сепульведа (20 июля 2019 г.). Точные результаты в клинической лаборатории: руководство по обнаружению и исправлению ошибок. Elsevier Science. п. 131. ISBN  978-0-12-813777-2.
  15. ^ а б Роуз, Джон Б.; Галинкин, Джеффри Л .; Jantzen, Ellen C .; Кьяваччи, Розетта М. (2002). «Исследование ионофореза лидокаина для детской венепункции». Анестезия и обезболивание. 94 (4): 867–71, содержание. Дои:10.1097/00000539-200204000-00017. PMID  11916787.
  16. ^ Лакруа, Элен (октябрь 2008 г.). «Безыгольная система доставки порошка лигнокаина уменьшила боль при венепункции у детей». Доказательная медицина. 11 (4): 106. Дои:10.1136 / ebn.11.4.106. PMID  18815318.
  17. ^ Робертсон, Дж (январь 2006 г.). «Липосомальный лидокаин улучшил показатели успешности внутривенной канюляции у детей». Очевидные медсестры. 9 (1): 10. Дои:10.1136 / ebn.9.1.10. PMID  16437788.
  18. ^ Робертсон, Дж (июль 2007 г.). «Обзор: отвлечение внимания, гипноз и комбинированные когнитивно-поведенческие вмешательства уменьшают боль и дистресс, связанные с иглой, у детей и подростков». Очевидные медсестры. 10 (3): 75. Дои:10.1136 / ebn.10.3.75. PMID  17596380.
  19. ^ «Сбор крови с помощью S-Monovette» (PDF). Получено 27 мая 2020.
  20. ^ Лессер, Финниан Д; Лэнхэм, Дэвид А; Дэвис, Дэниел (6 мая 2020 г.). «Кровь, взятая из существующих периферических внутривенных канюль, дает результаты, эквивалентные венепункции: систематический обзор». JRSM Open. 11 (5). Дои:10.1177/2054270419894817.
  21. ^ Гарсия, РА; Spitzer, ED; Бодри, Дж; Бек, С; Diblasi, R; Gilleeny-Blabac, M; Haugaard, C; Heuschneider, S; Кранц, BP; Маклин, К; Моралес, KL; Оуэнс, S; Paciella, ME; Торрегроса, Э (ноябрь 2015 г.). «Обзор многопрофильной группы передовых методов сбора и обработки посевов крови для определения эффективных вмешательств для увеличения урожайности истинно-положительных бактериемий, снижения загрязнения и устранения ложноположительных инфекций, связанных с центральной линией кровотока». Am J Infect Control. 43 (11): 1222–37. Дои:10.1016 / j.ajic.2015.06.030. PMID  26298636.
  22. ^ Хофф, Дж. (2000). «Методы взятия крови у мышей» (PDF). Лабораторное животное. 29 (10): 47–53.
  23. ^ а б Парасураман, S; Равендран, Р. Кесаван, Р. (2010). «Забор крови у мелких лабораторных животных». Журнал фармакологии и фармакотерапии. 1 (2): 87–93. Дои:10.4103 / 0976-500X.72350. ЧВК  3043327. PMID  21350616.
  24. ^ Парашураман, Субрамани; Жен, Хор Мин; Равендран, Рамасами (22 мая 2015 г.). «Забор ретроорбитальной крови у крыс - видео-статья». Фармакология, токсикология и биомедицинские отчеты. 1 (2): 37–40. Дои:10.5530 / PTB.1.2.1.

внешняя ссылка