Активный сайт - Active site

Лизоцим представлен в виде непрозрачной глобулярной поверхности с ярко выраженной щелью, в которую плотно входит субстрат, изображенный на диаграмме.
Организация структура фермента и лизоцим пример. Сайты связывания отмечены синим, каталитические сайты отмечены красным и пептидогликан подложка черного цвета. (PDB: 9LYZ​)

В биология, то активный сайт это регион фермент где субстрат молекулы связываются и подвергаются химическая реакция. Активный сайт состоит из аминокислотные остатки которые образуют временные связи с подложкой (сайт привязки ) и остатки, которые катализировать реакция этого субстрата (каталитического центра).[1] Хотя активный центр занимает всего ~ 10–20% от объема фермента,[2]:19 это самая важная часть, поскольку она непосредственно катализирует химическая реакция. Обычно он состоит из трех-четырех аминокислот, в то время как другие аминокислоты в белке необходимы для поддержания третичная структура фермента.[3]

Каждый активный центр эволюционирует, чтобы быть оптимизированным для связывания определенного субстрата и катализатора конкретной реакции, что приводит к высокой специфичность. Эта специфичность определяется расположением аминокислот в активном центре и структурой субстратов. Иногда ферментам также необходимо связываться с некоторыми кофакторы выполнять свою функцию. Активный центр обычно представляет собой бороздку или карман фермента, который может располагаться в глубоком туннеле внутри фермента.[4] или между интерфейсами мультимерные ферменты. Активный центр может повторно катализировать реакцию, поскольку остатки не изменяются в конце реакции (они могут изменяться во время реакции, но регенерируются к концу).[5] Этот процесс достигается за счет снижения энергия активации реакции, поэтому у большего количества субстратов будет достаточно энергии для прохождения реакции.[6]

Сайт привязки

Схема гипотезы замка и ключа
Схема гипотезы индуцированной подгонки

Обычно молекула фермента имеет только два активных центра, и они подходят для одного определенного типа субстрата. Активный сайт содержит сайт связывания, который связывает субстрат и ориентирует его для катализа. Ориентация субстрата и непосредственная близость между ним и активным центром настолько важны, что в некоторых случаях фермент все еще может функционировать должным образом, даже если все другие части мутировавший и теряют функцию.[7]

Первоначально взаимодействие между активным центром и субстратом нековалентное и временное. Существует четыре важных типа взаимодействия, которые удерживают субстрат в определенной ориентации и образуют комплекс фермент-субстрат (комплекс ES): водородные связи, Ван-дер-Ваальсовы взаимодействия, гидрофобные взаимодействия и электростатическая сила взаимодействия.[8]:148 Распределение заряда на субстрате и активном сайте должно быть комплементарным, что означает, что все положительные и отрицательные заряды должны быть нейтрализованы. В противном случае их будет раздвигать отталкивающая сила. Активный сайт обычно содержит неполярный аминокислоты, хотя иногда могут встречаться и полярные аминокислоты.[3] Связывание субстрата с сайтом связывания требует не менее трех точек контакта для достижения стерео-, регио- и энантиоселективности. Например, алкогольдегидрогеназа который катализирует перенос гидрид ион из этиловый спирт к НАД+ взаимодействует с субстратом метильная группа, гидроксильная группа и про-(Р) водород, который будет отводиться во время реакции.[8]:149

Для выполнения своей функции ферменты должны принимать правильные белковая складка (родная складка) и третичная структура. Чтобы поддерживать эту заданную трехмерную структуру, белки полагаются на различные типы взаимодействий между своими аминокислотными остатками. Если этим взаимодействиям препятствуют, например, экстремальные значения pH, высокая температура или высокие концентрации ионов, это приведет к тому, что фермент будет денатурировать и теряют каталитическую активность.

Считается, что более плотное прилегание между активным центром и молекулой субстрата увеличивает эффективность реакции. Если герметичность между активным участком ДНК-полимераза и его субстрат увеличивается, точность воспроизведения, что означает, что правильная скорость репликации ДНК также увеличивается.[9] Большинство ферментов имеют глубоко скрытые активные центры, к которым может получить доступ субстрат через каналы доступа.[4]

Предлагаются три модели того, как ферменты соответствуют своему конкретному субстрату: модель замка и ключа, то индуцированный припадок модель и модель конформационного отбора. Последние два не исключают друг друга: за конформационным отбором может следовать изменение формы фермента. Кроме того, белок не может полностью соответствовать ни одной из моделей. Аминокислоты в сайте связывания убиквитина обычно следуют модели индуцированного соответствия, тогда как остальная часть белка обычно придерживается конформационного отбора. Факторы, такие как температура, вероятно, влияют на путь, осуществляемый во время связывания, при этом более высокие температуры, по прогнозам, увеличивают важность конформационного отбора и уменьшают важность индуцированного соответствия.[10]

Гипотеза замка и ключа

Эту концепцию предложил химик XIX века. Эмиль Фишер. Он предположил, что активный центр и субстрат представляют собой две стабильные структуры, которые идеально подходят без каких-либо дополнительных изменений, точно так же, как ключ вставляется в замок. Если один субстрат идеально связывается со своим активным центром, взаимодействия между ними будут самыми сильными, что приведет к высокой каталитической эффективности.

Со временем стали проявляться ограничения этой модели. Например, конкурентный ингибитор фермента метилглюкозид может прочно связываться с активным сайтом 4-альфа-глюканотрансфераза и отлично в нее вписывается. Однако 4-альфа-глюканотрансфераза не активна в отношении метилглюкозида, и перенос гликозила не происходит. Гипотеза Lock and Key не может объяснить это, так как она предсказывает высокую эффективность переноса метилглюкозид-гликозила из-за его прочного связывания. Помимо конкурентного торможения, эта теория не может объяснить механизм действия неконкурентные ингибиторы либо, поскольку они не связываются с активным центром, но, тем не менее, влияют на каталитическую активность.[11]

Гипотеза индуцированной подгонки

Даниэль Кошланд Теория связывания фермент-субстрат состоит в том, что активный центр и связывающая часть субстрата не совсем комплементарны.[12] Модель индуцированной подгонки является развитием модели с замком и ключом и предполагает, что активный сайт является гибким и меняет форму до тех пор, пока субстрат не будет полностью связан. Эта модель похожа на человека в перчатке: перчатка меняет форму, чтобы соответствовать руке. Фермент изначально имеет конформацию, которая привлекает его субстрат. Поверхность фермента гибкая, и только правильный катализатор может вызвать взаимодействие, ведущее к катализу. При связывании субстрата могут происходить конформационные изменения. После того, как продукты реакции отойдут от фермента, активный центр вернется к исходной форме. Эта гипотеза подтверждается наблюдением, что весь белковый домен может перемещаться на несколько нанометров во время катализа. Это движение белковой поверхности может создавать микросреды, способствующие катализу.[7]

Гипотеза конформационного отбора

Эта модель предполагает, что ферменты существуют во множестве конформаций, только некоторые из которых способны связываться с субстратом. Когда субстрат связывается с белком, равновесие в конформационном ансамбле смещается в сторону тех, которые способны связывать лиганды (поскольку ферменты со связанными субстратами выводятся из равновесия между свободными конформациями).[13]

Типы нековалентных взаимодействий

Положительно заряженный ион натрия и отрицательно заряженный ион фтора притягиваются друг к другу с образованием фторида натрия при электростатическом взаимодействии.
Водородная связь между двумя молекулами воды.
Сила Ван-дер-Ваальса между двумя молекулами ацетона. Нижняя молекула ацетона содержит частично отрицательный атом кислорода, который притягивает частично положительный атом углерода в верхнем ацетоне.
Гидрофобные и гидрофильные группы имеют тенденцию собираться с молекулами одного типа.

Электростатическое взаимодействие: В водной среде противоположно заряженные группы в боковых цепях аминокислот в активном центре и субстратах притягиваются друг к другу, что называется электростатическим взаимодействием. Например, когда карбоновая кислота (R-COOH) диссоциирует на RCOO и H+ ионы, COO привлечет положительно заряженные группы, такие как протонированные гуанидин боковая цепь аргинин.

Водородная связь: Водородная связь - это особый тип диполь-дипольное взаимодействие между частично положительным водород атом и частично отрицательный донор электронов которые содержат пару электронов, например кислород, фтор и азот. Прочность водородной связи зависит от химической природы и геометрического расположения каждой группы.

Сила Ван-дер-Ваальса: Сила Ван-дер-Ваальса образуется между противоположно заряженными группами из-за временного неравномерного распределения электронов в каждой группе. Если все электроны сосредоточены на одном полюсе группы, этот конец будет отрицательным, а другой конец - положительным. Хотя индивидуальная сила мала, так как общее количество взаимодействий между активным центром и субстратом велико, их сумма будет значительной.

Гидрофобное взаимодействие: Неполярные гидрофобные группы имеют тенденцию к агрегированию в водной среде и пытаются уйти из полярного растворителя. Эти гидрофобные группы обычно имеют длинную углеродную цепь и не реагируют с молекулами воды. При растворении в воде молекула белка сворачивается в шарообразную форму, оставляя гидрофильные группы снаружи, в то время как гидрофобные группы глубоко погружаются в центр.

Каталитический сайт

Фермент Протеаза TEV содержит каталитическая триада остатков (красный) в его каталитическом сайте. В субстрат (черный) связан сайт привязки чтобы сориентировать его рядом с триадой. PDB: 1лвм

Как только субстрат связывается и ориентируется на активный сайт, катализ можно начинать. Остатки каталитического сайта обычно очень близки к сайту связывания, и некоторые остатки могут играть двойную роль как в связывании, так и в катализе.

Каталитические остатки сайта взаимодействуют с субстратом, снижая энергия активации реакции и тем самым заставить ее продолжаться Быстрее. Они делают это с помощью ряда различных механизмов, включая приближение реагентов, нуклеофильный / электрофильный катализ и кислотно-основной катализ. Эти механизмы будут объяснены ниже.

Механизмы, участвующие в каталитическом процессе

Аппроксимация реагента

Во время ферментативной каталитической реакции субстрат и активный центр находятся в непосредственной близости. Этот подход преследует разные цели. Во-первых, когда субстраты связываются в активном центре, эффективная концентрация его значительно увеличивается, чем в растворе. Это означает, что количество молекул субстрата, участвующих в реакции, также увеличивается. Этот процесс также снижает энергия десольватации требуется для реакции. В растворе молекулы субстрата окружены молекулами растворителя, и молекулам фермента требуется энергия для их замены и контакта с субстратом. Поскольку объемные молекулы могут быть исключены из активного центра, этот выход энергии может быть минимизирован. Далее, активный центр предназначен для переориентации субстрата для снижения энергии активации реакции. Выравнивание субстрата после связывания блокируется в состоянии высокой энергии и может переходить к следующему этапу. Кроме того, эта привязка поддерживается энтропия поскольку затраты энергии, связанные с реакцией в растворе, в значительной степени исключаются, поскольку растворитель не может попасть в активный центр. В конце концов, активный сайт может манипулировать Молекулярная орбиталь подложки в подходящую ориентацию для снижения энергии активации.[8]:155–8

Электростатические состояния субстрата и активного центра должны дополнять друг друга. Поляризованная отрицательно заряженная боковая цепь аминокислоты отталкивает незаряженный субстрат. Но если переходное состояние предполагает формирование ион center, тогда боковая цепь теперь будет производить благоприятное взаимодействие.

Ковалентный катализ

Многие ферменты, включая сериновая протеаза, цистеиновая протеаза, протеинкиназа и фосфатаза эволюционировали, чтобы образовать временные ковалентные связи между ними и их субстратами, чтобы снизить энергию активации и позволить реакции происходить. Этот процесс можно разделить на 2 этапа: формирование и разрушение. Первый этап является этапом ограничения скорости, тогда как следующий этап необходим для регенерации интактного фермента.[8]:158

Нуклеофильный катализ: Этот процесс включает в себя передачу электронов от фермента. нуклеофил с подложкой, чтобы образовать между ними ковалентную связь во время переходного состояния. Сила этого взаимодействия зависит от двух аспектов: способности нуклеофильной группы отдавать электроны и электрофил принять их. Первый в основном зависит от основности (способности отдавать электронные пары) вида, а второй - от его пKа. На обе группы также влияют их химические свойства, такие как поляризуемость, электроотрицательность и потенциал ионизации. Аминокислоты, которые могут образовывать нуклеофилы, включая серин, цистеин, аспартат и глутамин.

Электрофильный катализ: Механизм этого процесса точно такой же, как у нуклеофильного катализа, за исключением того, что теперь аминокислоты в активном центре действуют как электрофил в то время как субстраты нуклеофилы. Для этой реакции обычно требуются кофакторы, так как боковые цепи аминокислот недостаточно сильны для притяжения электронов.

Ионы металлов

Ионы металлов выполнять несколько ролей во время реакции. Во-первых, он может связываться с отрицательно заряженными группами субстрата, поэтому они не будут отталкивать электронные пары от нуклеофильных групп активного центра. Он может притягивать отрицательно заряженные электроны для повышения электрофильности. Он также может соединять активный центр и субстрат. Наконец, они могут изменить конформационную структуру субстрата в пользу реакции.[8]:158

Кислотно-щелочной катализ

В некоторых реакциях протоны и гидроксид может непосредственно действовать как кислота и основание при специфическом кислотном и специфическом щелочном катализе. Но чаще группы в субстрате и активном центре действуют как кислота и основание Бренстеда – Лоури. Это называется общей теорией кислоты и общей теории оснований. Самый простой способ отличить их - проверить, скорость реакции определяется концентрациями общей кислоты и основания. Если "да", то реакция носит общий характер. Поскольку большинство ферментов обладают оптимальным pH от 6 до 7, аминокислоты в боковой цепи обычно имеют пKа из 4 ~ 10. Кандидат включает аспартат, глутамат, гистидин, цистеин. Эти кислоты и основания могут стабилизировать нуклеофил или электрофил, образующийся во время катализа, обеспечивая положительные и отрицательные заряды.[8]:164–70

Конформационное искажение

Количественные исследования ферментативных реакций часто показывают, что ускорение скорости химической реакции не может быть полностью объяснено существующими теориями, такими как приближение, кислотно-щелочной катализ и электрофильный / нуклеофильный катализ. И возникает очевидный парадокс: в обратимой ферментативной реакции, если активный центр идеально подходит для субстратов, то обратная реакция будет замедляться, так как продукты не могут идеально вписаться в активный сайт. Таким образом, было введено конформационное искажение и утверждается, что и активный центр, и субстрат могут подвергаться конформационным изменениям, чтобы соответствовать друг другу все время.[8]:170–5

Предварительно организованная комплементарность активного сайта переходному состоянию

Эта теория немного похожа на теорию замка и ключа, но в настоящее время активный сайт предварительно запрограммирован для идеального связывания с субстратом в переходном состоянии, а не в основном состоянии. Формирование переходного состояния в растворе требует большого количества энергии для перемещения молекул растворителя, и реакция замедляется. Таким образом, активный центр может замещать молекулы растворителя и окружать субстраты, чтобы минимизировать контрпродуктивный эффект, вызываемый раствором. Наличие заряженных групп в активном центре будет привлекать субстраты и обеспечивать электростатическую комплементарность.[8]:176–8

Примеры механизмов ферментативного катализа

В действительности, большинство ферментных механизмов включает комбинацию нескольких различных типов катализа.

Глутатионредуктаза

механизм глутатионредуктазы

Роль глутатион (GSH) предназначен для удаления накопленных активных форм кислорода, которые могут повредить клетки. Во время этого процесса его тиол боковая цепь окисленный и две молекулы глутатиона соединены дисульфидная связь сформировать димер (GSSG). Чтобы регенерировать глутатион, дисульфидная связь должна быть разорвана. В клетках человека это осуществляется посредством глутатионредуктаза (GR).

Глутатионредуктаза - это димер, содержащий две идентичные субъединицы. Это требует одного НАДФ и один FAD как кофакторы. Активный сайт расположен в связи между двумя субъединицами. NADPH участвует в генерации FADH-. На активном сайте есть два цистеин остатки помимо кофактора FAD и используются для разрыва дисульфидной связи во время каталитической реакции. НАДФН связывается тремя положительно заряженными остатками: Arg-218, His-219 и Arg-224.

Каталитический процесс начинается, когда FAD уменьшенный НАДФН принимает один электрон и от ФАДН. Затем он атакует дисульфидную связь, образованную между 2 остатками цистеина, образуя одну связь SH и одну S группа. Это S группа будет действовать как нуклеофил, чтобы атаковать дисульфидную связь в окисленном глутатионе (GSSG), разрывая ее и образуя комплекс цистеин-SG. Первый SG анион высвобождается, а затем получает один протон от соседней группы SH и от первого мономера глутатиона. Далее соседний S группа атакует дисульфидную связь в комплексе цистеин-SG и высвобождает второй SG анион. Он получает один протон в растворе и образует второй мономер глутатиона.

[2]:137–9

Химотрипсин

Механизм расщепления пептидной связи химотрипсином.

Химотрипсин это серинэндопептидаза что присутствует в панкреатический сок и помогает гидролиз из белки и пептид.[2]:84–6 Катализирует гидролиз пептидных связей в L-изомеры из тирозин, фенилаланин, и триптофан. В активном центре этого фермента три аминокислотных остатка работают вместе, образуя каталитическая триада который составляет каталитический центр. В химотрипсине этими остатками являются Ser-195, His-57 и Asp-102.

Механизм действия химотрипсина можно разделить на две фазы. Во-первых, Ser-195 нуклеофильно атакует пептидная связь углерод в подложке с образованием тетраэдрического промежуточного соединения. Нуклеофильность Ser-195 усиливается His-57, который отрывает протон от Ser-195 и, в свою очередь, стабилизируется отрицательно заряженным карбоксилат группа (RCOO) в Asp-102. Кроме того, тетраэдрический оксианион промежуточный продукт, генерируемый на этом этапе, стабилизируется водородные связи из Сер-195 и Гли-193.

На втором этапе группа R'NH протонируется His-57 с образованием R'NH2 и оставляет промежуточное звено, оставляя позади ацилированный Сер-195. His-57 затем снова действует как основание, чтобы оторвать один протон от молекулы воды. Результирующий гидроксид анион нуклеофильно атакует комплекс ацил-фермент с образованием второго тетраэдрического оксианионного интермедиата, который снова стабилизируется водородными связями. В конце концов, Ser-195 покидает тетраэдрический промежуточный продукт, разрывая связь CO, которая связывает фермент с пептидным субстратом. Протон передается на Ser-195 через His-57, так что все три аминокислоты возвращаются в свое исходное состояние.

Развязывание

На отслоение субстрата влияют различные факторы. Лиганды большего размера обычно дольше остаются в активном центре,[14] как и те, у которых больше вращающихся связей (хотя это может быть побочным эффектом размера).[15] Когда растворитель исключен из активного центра, менее гибкие белки приводят к более длительному время пребывания. Большее количество водородных связей, защищенных от растворителя, также уменьшает расщепление.[14]

Кофакторы

Редокс-состояния флавина.

Ферменты можно использовать кофакторы как «вспомогательные молекулы». Коферменты относятся к тем небелковым молекулам, которые связываются с ферментами, чтобы помочь им выполнять свою работу. В основном они связаны с активным центром нековалентными связями, такими как водородная связь или гидрофобное взаимодействие. Но иногда между ними также может образовываться ковалентная связь. Например, гем в цитохром с связывается с белком через тиоэфирная связь. В некоторых случаях коферменты могут оставлять ферменты после завершения реакции. В противном случае они навсегда связываются с ферментом.[8]:69 Коэнзим - это широкое понятие, которое включает ионы металлов, различные витамины и АТФ. Если ферменту нужен кофермент для работы сам по себе, он называется апоферментом. Фактически, он сам по себе не может должным образом катализировать реакции. Только когда его кофактор входит и связывается с активным сайтом с образованием холоэнзима, он работает правильно.

Одним из примеров кофактора является Флавин. Он содержит отдельную конъюгированную изоаллоксазиновую кольцевую систему. Флавин имеет несколько окислительно-восстановительные состояния и может использоваться в процессах, связанных с переносом одного или двух электронов. Он может действовать как акцептор электронов в реакции, такой как окисление НАД до НАДН, принимать два электрона и образовывать 1,5-дигидрофлавин. С другой стороны, он может образовывать семихинон (свободный радикал ), принимая один электрон, а затем преобразуется в полностью восстановленную форму путем добавления дополнительного электрона. Это свойство позволяет использовать его в процессе одноэлектронного окисления.

Ингибиторы

Ингибиторы нарушают взаимодействие между ферментом и субстратом, замедляя скорость реакции. Существуют разные типы ингибиторов, включая как обратимые, так и необратимые формы.

Конкурентные ингибиторы являются ингибиторами, которые нацелены только на свободные молекулы ферментов. Они конкурируют с субстратами за свободный акцептор фермента и могут быть преодолены путем увеличения концентрации субстрата. У них есть два механизма. Конкурентные ингибиторы обычно имеют структурное сходство с субстратами и / или комплексом ES. В результате они могут вписаться в активный сайт и инициировать благоприятные взаимодействия, чтобы заполнить пространство и заблокировать проникновение субстратов. Они также могут вызывать временные конформационные изменения в активном центре, поэтому субстраты не могут идеально с ним соответствовать. Через короткий период времени конкурентные ингибиторы исчезнут, и фермент останется нетронутым.

Ингибиторы классифицируются как неконкурентные ингибиторы когда они связывают как свободный фермент, так и комплекс ES. Поскольку они не конкурируют с субстратами за активный центр, их нельзя преодолеть простым увеличением концентрации субстрата. Обычно они связываются с другим сайтом фермента и изменяют трехмерную структуру активного сайта, чтобы блокировать проникновение или выход субстратов из фермента.

Необратимые ингибиторы похожи на конкурентные ингибиторы, поскольку они оба связываются с активным сайтом. Однако необратимые ингибиторы образуют необратимые ковалентные связи с аминокислотными остатками в активном центре и никогда не уходят. Следовательно, активный центр занят и субстрат не может проникнуть. Иногда ингибитор уходит, но форма каталитического центра постоянно меняется. Эти ингибиторы обычно содержат электрофильные группы, такие как галоген заменители и эпоксиды. Со временем все больше и больше ферментов связываются необратимыми ингибиторами и больше не могут функционировать.

примерПривязывает активный сайт?Снижает скорость реакции?
Конкурентоспособный обратимый ингибиторИнгибиторы протеазы ВИЧдада
Неконкурентный обратимый ингибиторТяжелые металлы, такие как свинец и ртутьНетда
Необратимый ингибиторЦианиддада

Примеры конкурентных и необратимых ингибиторов ферментов

Конкурентный ингибитор: ингибитор протеазы ВИЧ.

Индинавир, ингибитор протеазы ВИЧ.jpg

Ингибиторы протеазы ВИЧ используются для лечения пациентов с СПИД вирус, предотвращая его Репликация ДНК. Протеаза ВИЧ используется вирусом для расщепления полипротеина Gag-Pol на 3 более мелких белка, которые отвечают за сборку, упаковку и созревание вириона. Этот фермент нацелен на специфические фенилаланин -пролин сайт расщепления в целевом белке.[16] Если протеаза ВИЧ отключена, частица вириона потеряет функцию и не сможет инфицировать пациентов. Поскольку он необходим для репликации вируса и отсутствует у здорового человека, он является идеальной мишенью для разработки лекарств.

Протеаза ВИЧ принадлежит к аспарагиновая протеаза семейство и имеет аналогичный механизм. Во-первых аспартат остаток активирует молекулу воды и превращает ее в нуклеофил. Затем он атакует карбонильная группа в пределах пептидная связь (NH-CO) с образованием тетраэдрического промежуточного соединения. Атом азота в промежуточном продукте получает протон, образуя амидная группа и последующая перегруппировка приводит к разрыву связи между ним и промежуточным продуктом и образует два продукта.[17]

Ингибиторы обычно содержат негидролизуемые гидроксиэтиленовые или гидроксиэтиламиновые группы, которые имитируют тетраэдрический промежуточный продукт. Поскольку они имеют схожую структуру и электростатическое расположение с переходным состоянием субстратов, они все еще могут помещаться в активный центр, но не могут быть разрушены, поэтому гидролиз не может происходить.

Неконкурентный ингибитор: Стрихнин.

Стрихнин - это нейротоксин который вызывает смерть, поражая нервы, которые контролируют мышечное сокращение и вызвать затруднение дыхания. Импульс передается между синапсами через нейротрансмиттер называется ацетилхолин. Он выпущен в синапс между нервными клетками и связывается с рецепторами постсинаптической клетки. Затем потенциал действия генерируется и передается через постсинаптическую клетку, чтобы начать новый цикл.

Глицин может подавлять активность рецепторов нейротрансмиттеров, таким образом, для запуска потенциала действия требуется большее количество ацетилхолинэстеразы. Это гарантирует, что генерация нервных импульсов строго контролируется. Однако при добавлении стрихнина этот контроль нарушается. Он подавляет рецепторы глицина (a хлоридный канал ) и гораздо более низкий уровень концентрации нейромедиаторов может вызвать потенциал действия. Теперь нервы постоянно передают сигналы и вызывают чрезмерное сокращение мышц, что приводит к удушье и смерть.[18]

Необратимый ингибитор: диизопропилфторфосфат.

Необратимое ингибирование сериновой протеазы DIPF.

Диизопропилфторфосфат (DIFP) - необратимый ингибитор, блокирующий действие сериновая протеаза. Когда он связывается с ферментом а нуклеофильное замещение происходит реакция и освобождает один фтороводород молекула. Группа ОН в активном центре действует как нуклеофил, атакующий фосфор в DIFP и образуют тетраэдрический промежуточный продукт и высвобождают протон. Затем связь P-F разрывается, один электрон переносится на атом F, и он покидает промежуточное соединение как F анион. Он соединяется с протоном в растворе с образованием одной молекулы HF. Между активным центром и DIFP образуется ковалентная связь, поэтому боковая цепь серина больше не доступна для субстрата.[19]

В открытии лекарств

Идентификация активных сайтов имеет решающее значение в процессе открытие лекарств. Трехмерная структура фермента анализируется, чтобы определить остатки активного центра и разработать лекарства, которые могут в них поместиться. Протеолитические ферменты являются мишенями для некоторых лекарств, таких как ингибиторы протеазы, которые включают лекарства против СПИДа и гипертонии.[20] Эти ингибиторы протеаз связываются с активным сайтом фермента и блокируют взаимодействие с природными субстратами.[21] Важным фактором при разработке лекарств является сила связывания между активным центром и ингибитором фермента.[22] Если фермент, обнаруженный в бактериях, значительно отличается от фермента человека, то против этой конкретной бактерии может быть разработан ингибитор, не повреждая фермент человека.Если один вид ферментов присутствует только в одном виде организмов, его ингибитор можно использовать для их уничтожения.

Активные сайты могут быть нанесены на карту, чтобы помочь в разработке новых лекарств, таких как ингибиторы ферментов. Это включает в себя описание размера активного сайта, количества и свойств подсайтов, таких как детали связывающего взаимодействия.[20] Однако современная технология баз данных под названием CPASS (Сравнение структур протеиновых активных сайтов) позволяет более детально сравнивать активные сайты и находить структурное сходство с помощью программного обеспечения.[23]

Применение ингибиторов ферментов

примерМеханизм действия
Антибактериальный агентПенициллинБактериальный клеточная стенка состоит из пептидогликан. Во время роста бактерий существующее сшивание пептидогликанового волокна нарушается, поэтому новый мономер клеточной стенки может быть интегрирован в клеточную стенку. Пенициллин действует, подавляя транспептидаза который необходим для образования поперечных связей, поэтому клеточная стенка ослабляется и разрывается из-за тургорное давление.
Противогрибковое средствоАзолЭргостерол это стерол который образует мембрану клеточной поверхности грибы. Азол может ингибировать его биосинтез, подавляя Ланостерол 14 альфа-деметилаза, поэтому новый эргостерин не вырабатывается, а вредный 14α-ланостерин накапливается в клетке. Также азол может генерировать активные формы кислорода.
Антивирусный агентСаквинавирПротеаза ВИЧ необходима для расщепления полипротеина Gag-Pol на 3 отдельных белка, чтобы они могли функционировать должным образом и запускать процесс упаковки вируса. Ингибиторы протеазы ВИЧ, такие как саквинавир, подавляют его, поэтому новая зрелая вирусная частица не может быть получена.
ИнсектицидыФизостигминВ животном нервная система, Ацетилхолинэстераза требуется для разрушения нейротрансмиттера ацетилхолин в ацетат и холин. Физостигмин связывается со своим активным участком и подавляет его, поэтому импульсный сигнал не может передаваться по нервам. Это приводит к гибели насекомых, поскольку они теряют контроль над работой мышц и сердца.
ГербицидыЦиклогександионЦиклогександион нацелен на Ацетил-КоА карбоксилаза который участвует в первом этапе синтеза жира: АТФ-зависимый карбоксилирование из ацетил-КоА к малонил-КоА. Липиды важны в составе клеточной мембраны.

Аллостерические сайты

A - Активный сайт B - Аллостерический сайт C - Субстрат D - Ингибитор E - Фермент. Это диаграмма аллостерической регуляции фермента. Когда ингибитор связывается с аллостерическим сайтом, форма активного сайта изменяется, поэтому субстрат не может поместиться в него.

An аллостерический сайт представляет собой сайт фермента, не связанный с его активным сайтом, который может связывать эффекторную молекулу. Это взаимодействие - еще один механизм регуляции ферментов. Аллостерическая модификация обычно происходит в белках с более чем одной субъединицей. Аллостерические взаимодействия часто присутствуют в метаболических путях и полезны тем, что позволяют одной стадии реакции регулировать другую стадию.[21] Они позволяют ферменту иметь ряд молекулярных взаимодействий, помимо высокоспецифичного активного сайта.[21]

Смотрите также

Рекомендации

  1. ^ Шринивасан, Бхарат (27.09.2020). «Совет: обучение кинетике ферментов». Журнал FEBS. Дои:10.1111 / фев.15537. ISSN  1742-464X.
  2. ^ а б c Багг ТД (2004). Введение в химию ферментов и коферментов (PDF) (2-е изд.). Blackwell Publishing Limited. ISBN  9781405114523. Архивировано из оригинал (PDF) 22 марта 2018 г.
  3. ^ а б Шанмугам С (2009). Ферментные технологии. И К Международный издательский дом. п. 48. ISBN  9789380026053.
  4. ^ а б Правда Л, Берка К., Свободова Варжекова Р. и др. (2014). «Анатомия ферментных каналов». BMC Bioinformatics. 15: 379. Дои:10.1186 / s12859-014-0379-x. ЧВК  4245731. PMID  25403510.
  5. ^ Альбертс Б. (2010). Эссенциальная клеточная биология. Наука о гирляндах. п. 91. ISBN  9780815341291.
  6. ^ Шринивасан, Бхарат (27.09.2020). «Совет: обучение кинетике ферментов». Журнал FEBS. Дои:10.1111 / фев.15537. ISSN  1742-464X.
  7. ^ а б Дагмар Р., Грегори А. (2008). «Как работают ферменты». Наука. 320 (5882): 1428–1429. Дои:10.1126 / science.1159747. PMID  18556536. S2CID  43617575.
  8. ^ а б c d е ж грамм час я Роберт А. (2000). Ферменты: практическое введение в структуру, механизм и анализ данных (PDF) (2-е изд.). Вили-Блэквелл. ISBN  9780471359296.
  9. ^ Kool ET (1984). «Плотность активного сайта и соответствие субстрату при репликации ДНК». Ежегодный обзор биохимии. 71: 191–219. Дои:10.1146 / annurev.biochem.71.110601.135453. PMID  12045095.
  10. ^ Чермели, Питер; Палотаи, Робин; Нусинов, Рут (2010). «Индуцированная подгонка, конформационный отбор и независимые динамические сегменты: расширенный взгляд на связывающие события». Тенденции в биохимических науках. 35 (10): 539–546. Дои:10.1016 / j.tibs.2010.04.009. ISSN  0968-0004. ЧВК  3018770. PMID  20541943.
  11. ^ Даниэль Э (1995). "Теория замка и ключа и теория индуцированной подгонки". Angewandte Chemie International Edition. 33 (2324): 2375–2378. Дои:10.1002 / anie.199423751.
  12. ^ Салливан С.М. (2008). «Ферменты с активными сайтами, закрытыми крышкой, должны работать по механизму индуцированного соответствия вместо конформационного отбора». Труды Национальной академии наук Соединенных Штатов Америки. 105 (37): 13829–13834. Дои:10.1073 / pnas.0805364105. ЧВК  2544539. PMID  18772387.
  13. ^ Коупленд, Роберт А. (2013). «Целевое время пребывания препарата». Оценка ингибиторов ферментов при открытии лекарств. John Wiley & Sons, Ltd., стр. 287–344. ISBN  978-1-118-54039-8.
  14. ^ а б Пан, Альберт С .; Борхани, Дэвид В .; Дрор, Рон О .; Шоу, Дэвид Э. (2013). «Молекулярные детерминанты кинетики связывания лекарственного средства с рецептором». Открытие наркотиков сегодня. 18 (13–14): 667–673. Дои:10.1016 / j.drudis.2013.02.007. ISSN  1359-6446. PMID  23454741.
  15. ^ Миллер, Дункан С.; Ланн, Грэм; Джонс, Питер; Сабнис, Йогеш; Дэвис, Николай Л .; Дрисколл, Пол (2012). «Исследование влияния молекулярных свойств на кинетику связывания лиганда с его биологической мишенью». MedChemComm. 3 (4): 449–452. Дои:10.1039 / c2md00270a. ISSN  2040-2503.
  16. ^ Flexner C (1998). «Ингибиторы протеазы ВИЧ». Медицинский журнал Новой Англии. 338 (18): 1281–1292. Дои:10.1056 / NEJM199804303381808. PMID  9562584.
  17. ^ Ашраф Б., Чи-Хьюи В. (2003). «Протеаза ВИЧ-1: механизм и открытие лекарств». Органическая и биомолекулярная химия. 1 (1): 5–14. Дои:10.1039 / B208248A. PMID  12929379.
  18. ^ Грей В, Рик Дж (1993). «Цитопротекция путем ингибирования хлоридных каналов: механизм действия глицина и стрихнина». Науки о жизни. 53 (15): 1211–1215. Дои:10.1016 / 0024-3205 (93) 90539-Ф. PMID  8412478.
  19. ^ Янсен EF, Nuttig F, Balls AK (1949). «Способ ингибирования химотрипсина диизопропилфторфосфатом; введение фосфора». Журнал биологической химии. 179 (1): 201–204. PMID  18119235.
  20. ^ а б Шехтер I (2005). «Картирование активного сайта протеаз в 1960-х и рациональный дизайн ингибиторов / лекарств в 1990-х». Современная наука о белках и пептидах. 6 (6): 501–512. Дои:10.2174/138920305774933286. PMID  16381600.
  21. ^ а б c ДеДеккер Б.С. (2000). «Аллостерические препараты: мышление за пределами активной зоны». Химия и биология. 7 (5): 103–107. Дои:10.1016 / S1074-5521 (00) 00115-0. PMID  10801477.
  22. ^ Zuercher M (2008). «Дизайн лекарств на основе структуры: изучение правильного заполнения аполярных карманов на ферментно-активных участках». Журнал органической химии. 73 (12): 4345–4361. Дои:10.1021 / jo800527n. PMID  18510366.
  23. ^ Пауэрс Р. (2006). «Сравнение структур активных сайтов белков для функциональной аннотации белков и дизайна лекарств». Белки. 65: 124–135. Дои:10.1002 / prot.21092. PMID  16862592.

дальнейшее чтение

  • Алан Фершт, Структура и механизм в науке о белках: руководство по ферментному катализу и сворачиванию белков. У. Х. Фриман, 1998. ISBN  0-7167-3268-8
  • Багг Т. Введение в химию ферментов и коферментов. (2-е издание), Blackwell Publishing Limited, 2004 г. ISBN  1-4051-1452-5.